Установка замкнутого водоснабжения для выращивания раков: Выращивание рака АККР в системе УЗВ, оборудование. Equipment for growing cancer (Cherax quadricarinatus).

Содержание

УЗВ для осетра и раков — проектирование, изготовление, установка

УЗВ (установка замкнутого водоснабжения) — это система для выращивания гидробионтов в промышленных целях с минимально возможными затратами и максимальной плотностью посадки. Разведение ценных пород рыб и ракообразных активно используется аквакультурными хозяйствами во всем мире для продажи в розницу в магазинах и реализации в ресторанном бизнесе. В УЗВ создается оптимальная среда для жизнедеятельности и размножения гидробионтов, что способствует высокому темпу роста и стабильному спросу на товарную продукцию. Система состоит из нескольких бассейнов, оборудованных фильтрами и приспособлениями, обеспечивающими постоянное насыщение кислородом. Это позволяет разводить живых организмов даже в суровых климатических условиях.

Компания AQUAdepo занимается проектированием, изготовлением и установкой УЗВ для осетра и раков, используя собственные передовые технологии. Мы оказываем весь комплекс услуг: от разработки схем и чертежей до ввода в эксплуатацию и последующего технического обслуживания. Наши УЗВ оснащены всеми необходимыми приспособлениями жизнеобеспечения и позволяют одновременно содержать несколько видов гидробионтов.

Осетр – одна из самых популярных видов рыб, выращиваемых в УЗВ. Осетровых приобретают рестораны, переработчики и частные покупатели. Мясо такой рыбы считается деликатесом, а ее икра является продуктом премиум класса, который продается отдельной целевой аудитории. Выращивать осетра с применением УЗВ можно в любом месте, вне независимости от региона и климатических условий. Среди плюсов разведения — постоянно растущий спрос, невысокий уровень конкуренции и быстрая окупаемость вложений. Использование УЗВ позволяет обеспечить живой рыбе нужное количество кислорода, помогает поддерживать определенную температуру (от +18 до +20), благодаря чему, необходимая товарная масса набирается уже в первые годы жизни.

Раки представляют особый интерес для ресторанного бизнеса и баров, так как приносят неплохой доход с продажи. Они обладают лучшими показателями по приросту и кормовому коэффициенту, себестоимость выращивания не высока — 300-400руб/кг. Для разведения раков с помощью УЗВ понадобится хорошо отапливаемое помещение, с температурой не ниже 20С. Вода в емкости должна быть минимум 20С, максимум — 26С. УЗВ для выращивания раков позволяет в полной мере управлять оптимальными параметрами — температурой, кислородом, степенью фильтрации. Благодаря высокой степени посадки и многоярусной конструкции обеспечивается прирост 40-50 особей и предоставляется возможность разведения в любых климатических условиях.

Обратившись в компанию AQUAdepo, Вы сможете заказать качественно спроектированную УЗВ для реализации проектов любой сложности. Продукция, выращенная в такой системе, будет органически чистой, без химии, привкусов, тяжелых металлов и нефтепродуктов, на нее Вам не придется долго искать покупателей. Мы заботимся о своей репутации и отвечаем за высокое качество изготавливаемого оборудования.

Формирование ремонтно-маточного стада австралийского красноклешневого рака ( Cherax quadricarinatus ) в индустриальной аквакультуре | Анкешева

1. Арыстангалиева В.А. Разработка технологии выращивания посадочного материала австралийского красноклешневого рака (Cherax quadricarinatus) в установке с замкнутым водоиспользованием : автореф. дис. … канд. сельскохозяйственных наук. — М., 2017. — 24 с.

2. Борисов Р.Р., Ковачева Н.П., Акимова М.Ю., Паршин-Чудин А.В. Биология и культивирование австралийского красноклешневого рака Cherax quadricarinatus (von Martens, 1868) : моногр. — М. : ВНИРО, 2013. — 48 с.

3. Брайнбалле Я. Руководство по аквакультуре в установках замкнутого водоснабжения. Введение в новые экологические и высокопродуктивные замкнутые рыбоводные системы. — Копенгаген : ФАО, 2010. — 70 с.

4. Жигин А.В. Замкнутые системы в аквакультуре : моногр. — М. : Изд-во РГАУ-МСХА им. К.А. Тимирязева, 2011. — 664 с.

5. Жигин А.В., Арыстангалиева В.А., Ковачева Н.П. Влияние температуры воды на рост и выживаемость австралийских красноклешневых раков // Природные ресурсы, их современное состояние, охрана, промысловое и техническое использование : мат-лы 8-й всерос. науч.-практ. конф., посвящ. 75-летию рыбохозяйственного образования на Камчатке. –– ПетропавловскКамчатский : КамчатГТУ, 2017. — Ч. 1. — С. 86–89.

6. Колмыков Е.В. Инструкция по разведению речных раков. — Астрахань : КаспНИРХ, 2004. — 30 с.

7. Купинский С.Б. Продукционные возможности рыбохозяйственных водоемов и объектов рыбоводства : учеб. пособие. — СПб. : Лань, 2019. — 232 с.

8. Купинский С.Б. Радужная форель — предварительные параметры стандартной модели массонакопления // Индустриальное рыбоводство в замкнутых системах : сб. науч. тр. ВНИИПРХ. — 1986. — Вып. 46. — С. 109–115.

9. Лагуткина Л.Ю., Мартьянов А.С., Степанов Р.В., Шейхгасанов К.Г. Оптимизация технологии кормления австралийских раков с помощью рецептур экспериментальных кормов // Вестн. АГТУ. Сер. Рыб. хоз-во. — 2016. — № 1. — С. 77–86.

10. Пат. РФ № 2709973. МПК A01K 61/00 (2006.01). Способ товарного выращивания тропических видов в прудовой поликультуре / А.И. Хорошко, В.Н. Крючков. — Заявл. 30.10.2017; Опубл. 23.12.2019; Бюл. № 36.

11. Шокашева Д.И. Рост молоди австралийского рака Cherax quadricarinatus в индустриальных условиях в зависимости от температуры среды // Вестн. АГТУ. Сер. Рыб. хоз-во. — 2018. — № 2. — С. 98–103. DOI: 10.24143/2073-5529-2018-2-98-103.

12. De Bock M.S., López Greco L.S. Sex reversal and growth performance in juvenile females of the freshwater crayfish Cherax quadricarinatus (Parastacidae): effect of increasing temperature and androgenic gland extract in the diet // Aquacult. Int. — 2010. — № 18. — P. 231–243. DOI: 10.1007/s10499-008-9239-x.

13. Lawrence C., Jones C. Chapter Cherax // Biology of Freshwater Crayfish. — Oxford : Blackwell Science, 2002. — P. 635–670.

14. Meade M.E., Doeller J.E., Kraus D.W., Walls S.A. Effects of temperature and salinity on weight gain, oxygen consumption rate, and growth efficiency in juvenile red-claw crayfish Cherax quadricarinatus // Journal of the World Aquaculture Society. — 2002. — Vol. 33, № 2. — P. 188–198.

15. Sagi A., Milstein A., Eran Y. et al. Culture of the Australian red-claw crayfish (Cherax quadricarinatus) in Israel. II. Second growout season of overwintered populations // Israeli J. Aquacult. — Bamidgeh. — 1997. — Vol. 49. — P. 222–229.

16. Saoud I.P., Ghanawi J., Thompson K.R., Webster C.D. A Review of the Culture and Diseases of Redclaw Crayfish Cherax quadricarinatus (Von Martens 1868) // Journal of the World Aquaculture Society. — 2013. — Vol. 44, № 1. — P. 1–29. DOI: 10.1111/jwas.12011.

17. Souty-Grosset C., Holdich D.M., Noel P.Y., Reynolds J.D. Atlas of Crayfish in Europe. — Paris : Museum national d’Histoire naturelle. — 2006. — 187 p.

18. Xiaoxuan C., Zhixin W., Licai H. Effects of water temperature on ingestion and growth of Cherax quadricarinatus // J. Huazhong (Central China) Agricultural University. — 1995. — Vol. 14(5). — P. 477–480.

Мини установка для частных хозяйств — Vismar Aqua

Наша компания предлагает новинку на рынке Украины – рециркуляционные аквакультурные системы (РАС, УЗВ – старое название

) для выращивания рыбы в небольших количествах для собственного потребления.

Что может быть лучше, чем выращенная собственными руками рыба? Вы точно знаете, что она ела, в какой воде плавала и можете гарантировать пищевую безопасность продукта для своих детей, внуков, родителей, гостей и других людей, которых вы решите угостить рыбкой.

Для комплектования установок замкнутого водоснабжения используются также системы водоочистки ― специальное оборудование, при помощи которого возможно очищать отработанную воду и использовать ее повторно (метод рециркуляции в рыбоводстве). РАС в процессе работы способны поднять уровень производства товарной продукции, многократно окупая вложенные средства.

Для систем водоочистки в комплексе используется различное фильтрационное оборудование:

  • механические фильтры;
  • биофильтры;
  • аэраторы и др.

РАС на 10 000 литров состоит из: 

№ п/п Наименование Ед.измер Кол-во Цена за ед., евро ВСЕГО, евро
1 Емкость для выращивания рыбы d-1,5 h-0,75 м3 10 350 3500,00
2 Барабанный Фильтр Sakura EcoDrum 20S шт 1 2000 2000,00
3 Биофильтр Sakura d-1,2  h-2, 0; Бионоситель Helix   1,4м3 шт 1 2500 2500,00
4 Система аэрации шт 1 1000 1000,00
5 Насос FTP 16000   180 Вт шт 1 390 390,00
6 Лампа Pro Pond Advantage UV 110 шт 1 750 750,00
7 Труба ПВХ 110 мм PN10 м/п 36 8,7 313,20
8 Тройник 90 ° 100мм шт 10 13,6 136,00
9 Заслонка 110 мм шт 10 90 900,00
10 Труба ПВХ  90 мм PN10 шт 24 6,65 159,60
11 Тройник 90 ° 90мм шт 10 9,35 93,50
12 Дополнительная фурнитура 300,00
ИТОГО 12042,30


В данном РАС в год вы сможете легко выращивать:

  • 500-600 кг осетровых
  • 1200-1500 кг тиляпии
  • 2500-3000 кг клариевого сома
  •  400-500 кг форели

До 1 ноября 2015 вы можете заказать данную систему под ключ по цене 285 000 гривен. Актуальная цена на сайте нашего магазина для рыбоводов.

 

ХАРКІВСЬКА ІНЖЕНЕРНА КОМПАНІЯ KHARKOV ENGINEERING COMPANY

Установки замкнутого водоснабжения для выращивания рыбы (УЗВ)

   Выращивание гидробионтов в установках замкнутого водоснабжения (УЗВ) является технологией для выращивания рыб или других водных организмов с повторным использованием воды для нужд производства. Данная технология основывается на использовании биологических и механических фильтров и, в сущности, может использоваться для выращивания любых объектов аквакультуры: рыб, моллюсков, креветок, раков, лангустов и т.д
   Основной задачей УЗВ является искусственное создание среды обитания гидробионтов, обеспечивающей максимальный выход товарной продукции в сокращённые сроки при сохранении качества товара. Кроме того, к такого вида установкам предъявляются требования эффективного использования водных ресурсов — минимальная подпитка, использование оборотной воды.
    
    Традиционные методы выращивания гидробионтов зависят от множества факторов, таких как: температура воды в реке или море, погодные условия, чистота воды, уровня кислорода и т.д. В УЗВ эти факторы исключаются полностью или частично в зависимости от конструкции и скорости рециркуляции воды. Рециркуляция позволяет полностью контролировать все необходимые нормы воды. Слежение за такими параметрами как: концентрация растворенного кислорода, прозрачность воды, температура воды и даже освещенность происходит с помощью автоматических датчиков что гарантирует меньший стресс для рыбы и лучшие темпы роста. Что дает возможность прогнозировать к какому моменту рыба достигнет товарной массы. Также к плюсам УЗВ стоит отнести изолированность от внешних возбудителей различных заболеваний и возможность постоянно проводить профилактические мероприятия.
 
 Принцип действия УЗВ. УЗВ — это установка замкнутого водоснабжения для выращивания рыбы. Аквакультура находятся в бассейнах с высокой плотностью посадки. Подпитка в сутки свежей водой составляет не менее 5% от объема воды в установке. Это достигается путем применения системы механических и биологических фильтров для очистки отработанной воды для ее дальнейшего использования. Вся установка делается компактной и поэтому ее можно разместить в отапливаемом помещении, что делает УЗВ независимой от внешних условий среды. Рециркуляция воды обеспечивает более высокое и стабильное производство продукции аквакультуры с меньшим риском возникновения болезней, а также лучшие возможности для контроля параметров, влияющих на рост, в инкубационных цехах. Технология рециркуляции воды также подразумевает, что более нет необходимости в размещении рыбоводных заводов в нетронутых районах возле рек. Теперь они могут строиться почти в любом месте, где имеется – намного меньший, чем прежде – источник чистой, не содержащей патогенов воды.
    Для того чтобы удалить отходы жизнедеятельности гидробионтов из воды, ее необходимо постоянно очищать. Для этого вода из бассейнов по каналу подается на механическую фильтрацию, где из нее изымаются органические взвеси. Следующим этапом вода поступает в биологический фильтр, где вредные для рыбы органические соединения преобразуются в нетоксичные продукты. Потом вода обеззараживается, обогащается кислородом и опять подается в бассейны. Это основной принцип работы УЗВ.
    Рециркуляция в системе УЗВ может происходить с разной интенсивностью. Для правильно сконструированной установки, находящейся в обособленном, отапливаемом помещении достаточно 200 литров свежей воды на килограмм выращенной рыбы. Для переоборудованных в узв традиционных хозяйств под открытым небом будет достаточно 3 м3 воды на килограмм. А обычные проточные системы используют порядка 30 м3 воды на килограмм произведенной рыбы. С экономической точки зрения меньшее количество потребляемой воды бесспорно выгодней. Также легче происходит процесс очистки отработанной воды, потому что ее объем в разы меньше. Узв можно считать самой экологической технологией среди остальных.
    Круглогодичное выращивание гидробионтов в закрытых аквакультурных фермах исключает режимы зимовки, тем самым интенсифицируется процесс роста. Чем качественней технология, тем тем лучше среда обитания и, как следствие, выше темпы роста рыбы. Кроме того, качественно очищенная воды позволяет повысить плотности посадки рыбы и более эффективно использовать производственные площади.

Преимущества технологии Установок Замкнутого Водоснабжения (УЗВ):

•    выращивание различных видов рыб вне зависимости от природных условий;
•   полная управляемость режимами выращивания рыбы: температурным, гидрохимическим (кислородным, pH), кормовым; ускоренные темпы роста рыб и повышение эффективности выращивания;
•   экономия в расходовании воды;
•  рациональное использование водных, земельных и людских ресурсов;
•  упрощение утилизации продуктов жизнедеятельности рыб;
•  проведение комплекса мероприятий по лечению и изоляции зараженных особей значительно легче, чем в открытых водоемах.

     С чего начать производство рыбы на собственной ферме?  Начинать, конечно, следует с анализа воды (в скважине, в водопроводе или в реке) в том месте, где будет расположена УЗВ. Следующим шагом необходимо определиться с желаемым количеством выращиваемой рыбы, от этого будет зависеть габариты устройства УЗВ и его возможности. Также от количества производимой в одной УЗВ рыбы зависит рентабельновсть Вашего бизнеса и его окупаемость.

Емкости для рыбы. Недорого

 Емкости для рыбы

Емкость для живой рыбы

 Наша компания производит емкости и бассейны для живой рыбы, оборудование для УЗВ.

 Изготовим на заказ современное оборудование, емкости для разведения и перевозки живой рыбы, ракообразных, моллюсков и других видов водных организмов.

 В своем производстве используем только экологически-чистые материалы – пластики, которые не выделяют и не впитывают вредные вещества и удобны в применении, легко моются.

Характеристики емкостей для рыбы от Ватер Групп

 Современные материалы и передовые технологии изготовления позволяют получить Заказчику бассейны, емкости, УЗВ для выращивания рыбы с высокими эксплуатационными свойствами:

  • Отсутствие коррозии;
  • Полная герметичность;
  • Большой срок службы;
  • Простота обслуживания;
  • Невысокая стоимость.

 В наших емкостях можно выращивать, содержать, перевозить самую «привередливую» живую рыбу и других обитателей водных ресурсов. Вода в УЗВ из пластика не впитывает никаких вредных веществ. Благодаря гладкой поверхности бассейнов для рыбы на их стенках исключено нарастание вредных микроорганизмов.

Купить бассейн, УЗВ для рыбы, раков

Емкости для разведения рыбы

У нас можно купить емкости и оборудования для разведения рыбы, раков как в промышленных масштабах, так и в небольших объемах – для «домашнего» применения.

 Изготовим на заказ необходимые для Вашего рыбного хозяйства бассейны и УЗВ (установки замкнутого водоснабжения) по заданным размерам.

 Как производитель компания Ватер Групп гарантирует:

  • Применение при изготовлении только качественного первичного сырья;
  • Высокую надежность и долговечность изделий;
  • Оптимальную стоимость без дополнительных наценок;
  • Оперативность в расчетах, проектировании, изготовлении;
  • Удобную и недорогую доставку в любой регион.

 Производим оборудование для разведения осетров, форели, карпов, раков, мидий и других видов.   

 Обращаясь к нам, Заказчик получает полную информацию, цены производителя и гарантированное качество!


Емкости для разведения и перевозки рыбы

Бассейны для разведения рыбы

Ванны, бассейны для рыбы и оборудование для разведения, перевозки рыбы, пластиковые емкости для УЗВ (установки замкнутого водоснабжения), емкости для разведения рыбы, выполненные из экологически чистых материалов, находят все большее применение в рыбоводческих хозяйствах. Главным неоспоримым преимуществом оборудования из пластика является отсутствие коррозии и как следствие стоит отметить долгий срок эксплуатации. Производство из пластика — процесс получения изделий с отличными свойствами, длительным сроком службы с сохранением начальных характеристик изделия по привлекательной цене в сравнении с изделиями из металла.

Компания Ватер Групп г. Челябинск производит на заказ по требуемым размерам, чертежам и эскизам ванны, бассейны для рыбы и технологические емкости для разведения и перевозки форелевых и осетровых, карпов, карася и других видов рыб, а также представителей морской фауны — крабов, осьминогов, кальмаров, мидий, раков и других видов.

Бассейны для разведения раков

Наше оборудование, в том числе и пластиковые емкости для УЗВ, широко применяется в рыбном хозяйстве для выращивания малька, разведения рыбы, ракообразных, перевозки живой рыбы, ракообразных, очистки оборотной воды и запаса воды. Также мы готовы изготовить торговое оборудование для реализации живых морепродуктов, бассейны живой рыбы.

Емкости для разведения ракообразных обычно имеют небольшую глубину до 300 мм при большой длине и разделены на отделения перегородками. Перегородки имеют зазор для циркуляции воды, однако зазор минимальный для исключения переползания раков из одного отсека в другой. В зависимости от технологии разведения, наличия площадей бассейны для раков могут изготавливаться по индивидуальным размерам.

Помимо главного преимущества в виде отсутствия коррозии, к основным плюсам оборудования из пластика для рыбоводческих хозяйств можно отнести легкость монтажа и эксплуатации, недорогую цену, большой срок эксплуатации и экологичность.

Транспортировка бассейнов для разведения рыбы

Самыми востребованными материалами изготовления оборудования для разведения рыбы и раков (ракообразных) являются в настоящее время полиэтилен (ПЭ) и полипропилен (ПП). Наша компания в своем производстве использует только лучшие материалы, имеющие все необходимые разрешения и допуски для данной отрасли производства рыбной продукции.

Наши бассейны для разведения рыбы и бассейны для раков легко дополняются всем необходимым стандартным технологическим оборудованием, начиная от лестниц и заканчивая компрессорами и другим водоочистным оборудованием. В случае необходимости наша компания произведет монтаж оборудования, необходимого в конкретной технологии.

Заказывая оборудование из пластика, необходимое Вам, Вы получаете индивидуальный подход к решению задачи, короткие сроки изготовления, оптимальную стоимость при высоком качестве.

Дополнительно может быть осуществлена доставка изделий в другие крупные города — Курган, Екатеринбург, Сургут, Ханты-Мансийск, Тюмень, Нижневартовск и др.

Чтобы узнать стоимость и заказать емкость для разведения рыбы или ракообразных, достаточно заполнить запрос на изготовление с указанием емкостного объема, материала изготовления, варианта установки и дополнительного оборудования. После получения данной информации будет произведен расчет стоимости и сроков изготовления, и специалист компании Ватер Групп г. Челябинск свяжется с Вами по предоставленным контактным данным.

Получить консультацию, узнать цену на емкости для разведения и перевозки рыбы, ракообразных и разместить заказ можно, связавшись со специалистом компании Ватер Групп г. Челябинск любым способом, указанным в контактной информации.


Дополнительные ссылки по теме:

выращивание рыбы в мини-установках замкнутого водоснабжения


Потребность человечества в морепродуктах растёт вместе с населением, а ценные виды рыб находятся на пределе максимально возможного улова. Традиционное рыбоводство требует избытка водных ресурсов. Растущее загрязнение мирового океана сказывается на качестве даров моря. Всё это способствуют популярности УЗВ (установок замкнутого водоснабжения), позволяющих выращивать экологически чистую рыбу в небольшом количестве воды.

УЗВ, позволяющие выращивать экологически чистую рыбу, набирают все большую популярность

Принцип работы УЗВ

В качестве системы жизнеобеспечения водных организмов в рециркуляционных аквакультурах незаменимы установки замкнутого водоснабжения, позволяющие использовать ежедневно не менее 90% восстановленной после жизнедеятельности рыб воды.

Как правило, УЗВ предназначены для интенсивных аквакультур с высокой продуктивностью на единицу объёма воды.

Верхний предел плотности рыбы в УЗВ на основе атмосферного воздуха составляет около 50 грамм на литр воды. В установках с использованием жидкого кислорода этот показатель может быть выше. Содержание такого количества живой рыбы в столь ограниченном объёме воды требует качественного проектирования и исполнения УЗВ. Как правило, рыба умирает от перенаселения, потому что:

  • задохнулась;
  • отравилась азотистыми отходами собственной жизнедеятельности.
УЗВ предназначены для активных аквакультур

Соответственно, верно функционирующая система циркуляции должна достаточно аэрировать воду, добавляя в неё кислород, и, наоборот, выводить диоксид углерода и аммиак.

Последний рыба выделяет в качестве продукта катаболизма белка. Для того чтобы эти процессы производились эффективно, необходимо предварительно отделять твёрдые экскременты и остатки корма.

Таким образом, восстановление воды включает в себя три процесса:

  1. Удаление твёрдых отходов.
  2. Газовый обмен.
  3. Денитрификация.

Последние два могут проводиться одновременно или в любой последовательности. Восстановление воды невозможно эффективно провести в самом аквариуме. Жидкость необходимо изымать для очистки и возвращать обратно, перемещая её с помощью насосов.

Устройство УЗВ может отличаться деталями от указанного на схеме

Устройство УЗВ от изображённого на схеме может отличаться наличием дополнительных модулей: фильтров, насосов, обеззараживателей, блока регулировки кислотности, нагревателей, кислородного генератора, измельчителей, автоматики, отстойников и т. п. Крупные фермы наращиваются умножением однотипных блоков. Основные преимущества систем рециркуляционной аквакультуры перед искусственными прудами и водоёмами:

  • не наносят ущерб окружающей среде;
  • дают возможность полного управления производственными процессами;
  • позволяют круглогодично выращивать рыбу;
  • не зависят от природных факторов;
  • помогают осуществлять полный контроль заболеваний;
  • работают в зонах экстремальных климатических условий.

Проектирование замкнутых аквакультур

В действующей системе все компоненты должны работать слаженно, иначе её продуктивность будет ограничена производительностью самого слабого блока.

Например, нет смысла в мощном нитрификаторе, если за его работой не успевает модуль газообмена. Прогноз нагрузок на каждый узел — единственно верный способ проектирования компонентов.

Правильной точкой отсчёта будет количество рыбы, планируемое к выращиванию. Этот показатель поможет разобраться с необходимым объёмом пищи, что, в свою очередь, позволит рассчитать, сколько кислорода понадобится для метаболизма этого корма. Другие вычисления дадут мощность установки для аэрации и т. п. Косвенные и прямые расчёты продолжают до тех пор, пока не будет разработан проект системы, теоретически поддерживающий предполагаемую нагрузку без избыточных мощностей каждого из блоков.

Точкой отсчета в сборке УЗВ является планируемое количество рыбы

Непромышленные УЗВ для выращивания рыбы своими руками для домашних хозяйств могут проектироваться на основании иных начальных условий. Доступность материалов и наличие свободного места в этом случае важнее производительности. Компоненты для таких систем могут изготавливаться из самых различных материалов, но должны быть обязательно инертными и не вступать в реакцию с водой. Оцинкованные и медные трубы для инсталляции в этом случае непригодны, так как могут быть токсичны по отношению к обитателям системы. Установка замкнутого водоснабжения для выращивания рыбы, исполненная из пластиковых ёмкостей, труб и фитингов — идеальный вариант.

Стеклопластиковые или полиэтиленовые резервуары химически нейтральны, легко чистятся и стерилизуются. Круглые ёмкости обладают преимуществом в сравнении с квадратными. Оно заключается в способности таких сосудов к самоочистке: если воду напорно подавать в радиальный аквариум под углом, то установится круговое движение.

Слив, организованный в центре, позволяет отходам и остаткам корма самостоятельно уходить в отверстие.

Простейшая самодельная установка

Из элементов, доступных в любом строительном магазине, и с помощью инструментов домашнего мастера можно за несколько часов изготовить мини-УЗВ своими руками. Чертёж установки из недорогих компонентов:

 

УЗВ можно собрать из недорогих материалов своими руками

Основа системы — две бочки, желательно предназначенные для пищевых целей. Одна из них служит аквариумом для рыбы, из нижней части которого при помощи насоса вода перемещается в пластиковое ведро, вмонтированное в верхнюю часть второй бочки. Оно является ёмкостью для механического фильтра, отделяющего остатки корма и твёрдые фекалии. Механически очищенная жидкость через стояк попадает на дно биофильтра для переработки азотистых отходов, а затем снова попадает в аквариум по возвратной трубе.

Подбор сантехнических компонентов зависит от максимальной мощности насоса, производительность которого можно регулировать шаровым краном на перегонном трубопроводе.

Подбор элементов УЗВ зависит от технических условий помещения

Механические фильтры можно сделать из хозяйственных губок или мебельного поролона. В качестве денитрификатора лучше использовать специальную плавающую биозагрузку для УЗВ. Воздушный компрессор низкого давления, нагнетающий воздух на дно аквариума, послужит аэратором.

Технические и биологические основы рециркуляционных аквакультур хорошо изучены. Накопленный опыт позволяет проектировать и изготавливать УЗВ любой сложности и масштабов. Единственный ограничивающий фактор, препятствующий бурному развитию замкнутых систем рыбоводства — экономика. Рыба из УЗВ дороже пойманной в открытом водоёме. Самые успешные рециркуляционные аквакультуры производят дорогие морепродукты для нишевых рынков или расположены в экстремальных климатических зонах. Эта технология пока не позволяет накормить весь мир, но её вклад в улучшение экологии водных бассейнов трудно переоценить.

Полезное для вас:

Расположение, проектирование и строительство пруда для выращивания раков

Хотя методы управления можно легко менять из года в год, попытки изменить пруды, которые были плохо спроектированы или неправильно построены, могут быть дорогостоящими. Перед началом строительства обратитесь за консультацией к местному агенту LSU AgCenter и местному инженеру службы охраны природных ресурсов Министерства сельского хозяйства США (USDA).

Местоположение

Пруды для ловли раков должны располагаться на ровных открытых участках, а грунты должны иметь достаточное количество глины.Должны быть доступны адекватные источники воды. Суглинки, супеси и пылеватые суглинки являются удовлетворительными типами почв. Глинистая почва необходима для удержания воды и поддержания целостности нор раков. Как правило, почвы, которые можно скатать в шар, содержат достаточно глины для выращивания раков. Возвышенности должны быть достаточно высокими, чтобы дно пруда оставалось выше уровня воды в окружающих дренажных канавах и каналах (Рисунок 1).

Рисунок 1. Для управления прудом с раками требуется достаточная высота для обеспечения хорошего дренажа.

Площадки для прудов на рисовых полях обычно ограничены существующими рисовыми полями. Тем не менее, важно учитывать, какие поля будут использоваться для выращивания раков. Из-за трудоемкости выращивания раков многие фермеры, выращивающие рис, обычно выделяют только от 10 до 50 процентов своих рисовых площадей под выращивание раков. Часто лучшие урожайные рисовые поля не выбираются для чередования с раками. Важно выбрать рисовые поля с адекватным всепогодным доступом, потому что промысел раков и управление прудом являются повседневными делами и часто происходят в дождливую погоду.Поля, выбранные для выращивания раков, должны иметь доступное и экономичное водоснабжение, поскольку потребность в воде для выращивания раков выше, чем для выращивания риса.

Размер поля и планировка могут быть важным фактором при выращивании раков на рисовых площадях. Дорожки для отлова более эффективны, если они длинные и прямые, а переходы через дамбы должны быть сведены к минимуму. Ограниченный доступ для вандалов и воров может быть важным фактором. Рассмотрение размещения полей, предназначенных для выращивания раков, также может быть важным с точки зрения пестицидов.Размещение прудов для выращивания раков между продуктивными агрономическими полями или с подветренной стороны от поля, где планируется применение инсектицида с воздуха, нецелесообразно.

Проектирование и строительство

При строительстве постоянных прудов для раков следует учитывать ряд соображений. Многие из них также относятся к рисовым полям, предназначенным для выращивания раков. По периметру дамбы должны быть очищены от мусора основные траншеи, чтобы предотвратить просачивание воды. Минимальная ширина основания дамбы по периметру должна быть 9 футов, чтобы предотвратить утечку в результате рытья раков.Система дамб высотой 3 фута достаточна, чтобы содержать минимум от 8 до 12 дюймов воды, необходимых для выращивания раков. Земля должна иметь не более 6 дюймов падения между дамбами по периметру. В противном случае участок следует выровнять или разделить на два и более пруда. Пруды с крутыми подъемами и, как следствие, колебаниями глубины препятствуют закладыванию корма, ограничивают методы управления водными ресурсами и снижают эффективность сбора урожая.

По возможности следует избегать широких и глубоких внутренних канав внутри прудов для разведения раков, которые обычно примыкают к большому периметру или большим отбойным дамбам.Эти глубокие участки обеспечивают путь наименьшего сопротивления для потока воды, что может уменьшить циркуляцию в других частях пруда, что может привести к ухудшению качества и уменьшению улова в районах, удаленных от канав. Кроме того, внутренние канавы трудно осушать, и они могут служить убежищем для хищных рыб после осушения прудов. Внутренние или отбойные дамбы сооружаются для направления воды через пруд для надлежащей аэрации и поддержания надлежащего качества воды (рис. 2).

Рис. 2.Отбойные дамбы часто можно сравнить с типичными контурными дамбами рисового поля. Суть в том, чтобы направить поток воды через пруд, чтобы избежать «мертвых» зон с низким содержанием кислорода или без него.

Отражательные дамбы имеют ширину около 6 футов у основания. Они должны выступать как минимум на 6 дюймов выше предполагаемого уровня воды в пруду. Если часть отбойных дамб над ватерлинией недостаточно велика, оседание и эрозия приведут к прорыву дамб через один-два года. Отбойные дамбы должны располагаться на расстоянии от 150 до 300 футов друг от друга, чтобы облегчить циркуляцию воды.Основные траншеи в отбойных дамбах не нужны. Канал рециркуляции за пределами дамбы по периметру и подкачивающий насос будут способствовать циркуляции воды и минимизировать сброс воды (рис. 3 и 4). Пруды, предназначенные для рециркуляции воды, важны в районах, где качество поверхностного водоснабжения колеблется или где колодезная вода должна откачиваться с больших глубин с большими затратами.

Дренаж должен соответствовать размеру пруда, производительности насоса и прогнозируемому количеству осадков (рис. 5). Двух 10-дюймовых дренажей достаточно для осушения пруда площадью 20 акров.Пруды должны обеспечивать доступ транспортных средств во влажных и сухих условиях и позволять эффективно использовать лесозаготовительное оборудование.

Рисунок 3. Многие пруды для выращивания раков можно приспособить для обеспечения циркуляции с помощью одного или нескольких насосов подпитки.

Чаще всего в прудах для выращивания раков в севооборотной системе риса и раков используются устоявшиеся рисовые поля, где планируются поля и закрепляются оросительные системы. Однако для достижения наилучших результатов с раками могут потребоваться некоторые модификации поля. Небольшие дамбы, подходящие для выращивания риса на мелководье (менее 5–6 дюймов в глубину), не подходят для выращивания раков, где уровень воды обычно поддерживается на уровне от 8 до 16 дюймов.Большие дамбы особенно важны для периметра, удерживающего воду. В то время как для производства риса требуется период удержания воды от 8 до 10 недель, пруды для выращивания раков обычно затапливаются на срок от 7 до 10 месяцев. Оседание, эрозия, закапывание грызунов и раков могут сказаться на небольших дамбах. Поэтому рисовые поля, предназначенные для выращивания раков, обычно требуют гораздо более высоких и широких дамб. Тем не менее, следует отметить, что строительство/реконструкция дамбы должна производиться до введения маточного стада раков, потому что ремонт дамбы после того, как раки зарылись в норы, может снизить выживаемость и воспроизводство маточного стада.

Рисунок 4. Когда пруды очень ровные, рециркуляция может осуществляться с помощью имеющихся в продаже или заводских лопастных аэраторов.

Дамбы также могут время от времени препятствовать попаданию паводковых вод в пруд с раками. Прорыв дамб от паводковых вод может разогнать раков из пруда и занести в пруд нежелательную рыбу. Благодаря электронному лазерному выравниванию некоторые рисовые поля стали очень большими с небольшим количеством внутренних дамб или без них. Если эти поля слишком велики, отношение линейной дамбы к общей площади пруда может быть слишком большим для оптимального воспроизводства, потому что раки используют дамбы как места для рытья нор.И наоборот, наличие слишком большого количества внутренних дамб потенциально обеспечивает избыточную площадь репродуктивных нор и может привести к перенаселению и низкорослости раков. Оптимальное соотношение площади дамбы и пруда не определено и зависит от географического положения и других условий.

Рисунок 5. Дренажи должны иметь достаточную пропускную способность для опускания прудов за короткий период времени.

Водяное орошение рисовых полей обычно предназначено для достижения эффективного водоотведения без особого внимания к максимальному содержанию кислорода в воде.Поэтому рекомендуется модифицировать выпускные отверстия для воды на оросительных колодцах, включив в них аэрационные экраны, чтобы максимизировать поступление кислорода и обеспечить наивысшее качество воды на полях, где будут выращивать раков.

Передовые методы управления строительством прудов для разведения раков

В сотрудничестве со Службой охраны природных ресурсов Министерства сельского хозяйства США (NRCS) был разработан набор передовых методов управления (BMP) для производства раков. (См. сводку в Таблице 4.) Эти методы направлены на минимизацию эрозии, уменьшение количества загрязняющих веществ (питательных веществ и пестицидов) в сбросах сточных вод и максимизацию пользы для дикой природы.

Таблица 4. Сводная информация о передовых методах управления Национальной службой охраны ресурсов (NRCS) Министерства сельского хозяйства США при проектировании и строительстве прудов для выращивания раков.

Практика консервации Код NRCS Комментарии
Подъездная дорога 560 Необходим для ежедневной транспортировки к раковым прудам для водопользования, корморазведения, сбора и продажи раков.Может препятствовать естественному стоку. Может способствовать заилению, если не правильно вегетировать. Может сократить среду обитания на водно-болотных угодьях.
Управление щетками 314 Может потребоваться для посадки кормов и прокладки лесозаготовительных полос. Физическое удаление может вызвать временные проблемы с мутностью. Маркированное использование гербицидов не окажет значительного воздействия на окружающую среду.
Русловая растительность 322 Мутность, вызванная отсутствием растительности в каналах, может усугубить проблемы с осаждением.Каналы с растительностью помогают решить проблемы с мутностью и улучшают качество воды, закачиваемой в пруды.
Использование растительных остатков 344 Естественная растительность может расти перед подготовкой к производству кормов, чтобы уменьшить эрозию во время осушения и посадки кормов. Обеспечивает среду обитания для диких животных. Укрытие улучшает влажность почвы и должно улучшить условия для раков в норах.
Фильтрующие ленты 393 Обеспечьте средства уменьшения осадка в поступающей и отводимой воде, где это целесообразно.Может уменьшить эрозию почвы.
Управление рыбными прудами 399 Пруды для выращивания раков, используемые для коммерческого выращивания раков. Глубина и производство корма отличаются от типичных рыбоводных прудов. Оказывает положительное воздействие на окружающую среду. Обеспечивает среду обитания для многих видов диких животных, таких как болотные птицы, водоплавающие птицы и многие пушные звери.
Канава орошаемая 388 Еще один эффективный инструмент для орошения, способствующий эффективному управлению и сохранению водных ресурсов.Обеспечивает путь для воды от источника к прудам.
Управление оросительной водой 449 Запланированное орошение, затопление и осушение для выращивания кормов и раков.
Уэллс 643 Колодезная вода рекомендуется вместо поверхностной воды.
Развитие водно-болотных угодий 657 Затопленные пруды для выращивания раков в большинстве случаев приносят большую пользу и улучшают качество воды, поступающей в поле и выходящей из него.Пруды и производство раков оказывают положительное влияние на окружающую среду.
Водно-болотные угодья дикой природы 644 Пруды с раками представляют собой более 120 000 акров искусственных водно-болотных угодий, которые приносят пользу водоплавающим, болотным птицам, галлинулам, куликам, пушным зверям, рептилиям, амфибиям и многочисленным беспозвоночным животным, которые приносят пользу другим видам диких животных.

Февраль 2010 г.

Аквакультура становится все более важным источником безопасных, питательных и экологичных морепродуктов для людей во всем мире.К 2030 году глобальное производство продукции аквакультуры должно удвоиться, чтобы не отставать от спроса. Это увеличение спроса на продукцию аквакультуры, соображения продовольственной безопасности и создание рабочих мест привели к увеличению потребности в квалифицированных работниках.

Узнайте, как вы можете стать частью этой быстро развивающейся отрасли.

Начало работы в аквакультуре | Университет штата Оклахома

Опубликовано в феврале 2017 г. | Идентификатор: NREM-9201

К Марли Бим

Введение

Аквакультура, разведение водных животных и растений в контролируемых условиях, является самой быстрорастущей формой альтернативного сельского хозяйства в Соединенных Штатах.Фотографии прудов, наполненных жадно кормящейся рыбой, поражают воображение людей через всю страну. Однако прежде чем заняться рыбным хозяйством, разумно ваш энтузиазм с объективным взглядом на преимущества и недостатки. Люди, интересующиеся аквакультурой, нередко имеют ошибочные представления. (Таблица 1).


Таблица 1 .Некоторые распространенные мифы об аквакультуре.

   
Вымысел: Любую рыбу или водное животное можно экономически выгодно выращивать на рыбной ферме
Факт: Больше нельзя.Отсутствие контроля над воспроизводством и питанием делает фермерство многих желательных видов в настоящее время нецелесообразно.
Вымысел: Я могу найти место для рыбной фермы на своем участке.
Факт: Большинство участков непригодны для разведения рыбы из-за отсутствия достаточного количества воды или грунты для строительства прудов.
Вымысел: Разводить рыбу относительно легко.
Факт: Рыбоводство – это сельское хозяйство, требующее тщательного управления, трудолюбия и умения терпеть риск.
Вымысел: Рыбоводство очень прибыльно.
Факт: Как и в других видах сельского хозяйства, уровень прибыли редко бывает чрезмерным.
Вымысел: Рыбоводство — хорошее занятие на пенсии.
Факт: Управление рыбной фермой требует тяжелой физической работы и может вызывать стресс.
Вымысел: Рыбалка — хороший фон для занятия рыбоводством.
Факт: Фермерство — лучший фон для занятия рыбоводством. Базовые навыки земледелия требуется работа на тракторе, ремонт оборудования и сварка.

 

Что производить?

Большинство новых рыбоводов в Оклахоме планируют выращивать канального сома, но многие другие также могут быть рассмотрены виды рыб и водных животных.Последующее обсуждение предназначен для того, чтобы вы могли рассмотреть несколько разных видов, указывая на достоинства и недостатки каждого. Некоторые из них включены, потому что они появляются перспективный для условий Оклахомы. Включены другие виды с плохим потенциалом только потому, что многие люди заинтересованы в них.

 

Наживка для рыбы

В Оклахоме много крупных рыболовных озер, и она является основным потребителем наживки.Золотые блестяшки, жирноголовые гольяны и золотые рыбки являются одними из самых популярных видов наживки. и может надежно производиться в прудах. Эти виды размножаются естественным образом и растут хорошо на недорогих кормах. Серия прудов с плоским дном, которые можно осушать, ловить неводом, и пополнения необходимы, поэтому покупатели могут поставляться на регулярной основе. Если вы рассматриваете производство наживки нужно знать, что в Арканзасе есть очень крупные производители оптовая продажа наживки в Оклахоме.Эти производители имеют низкие производственные затраты и будут вероятно, предложите свою рыбу по низким ценам, если вы попытаетесь конкурировать с ними напрямую. Дополнительная информация о производстве наживки доступна в публикациях SRAC 120-122, можно получить в окружном информационном центре.

 

Канальный сом

Разведение сома вносит значительный вклад в экономику многих южных штаты, включая Оклахому.Канальный сом предпочтительнее других видов сомов из-за его терпимости к обращению, хорошая конверсия корма, высокий процент выхода из строя и легкость нереста. Плоское дно пруды, заполненные колодезной водой, являются идеальным местом для выращивания сома, но водораздел пруды и садки в озерах также могут быть успешно использованы. Более полная информация о разведении сома содержится в информационном бюллетене OCES Extension NREM-9002 и Langston Издание университета под названием «Рыбоводство для меня?»

 

Раки

Производство раков оказалось экономичным в Луизиане и Техасе, и интерес распространился на другие государства.Крупные раки считаются деликатесом, а более мелкие пользуются спросом в качестве приманки. Красный болотный рак — традиционный вид к культуре. Зеленый прудовый рак (Orconectes nais) подвергается экспериментам в Канзас и выглядит многообещающе для Оклахомы. Потому что зеленый прудовой рак не зарывается летом, у него более длительный вегетационный период, чем у красного болота раки.

 

Экономическая целесообразность производства раков в условиях Оклахомы не все же было полностью продемонстрировано. Требования включают относительно ровную землю с хорошей водой вместимость и достаточное количество воды, чтобы поддерживать глубину воды от 1 1/2 до 2 футов. Много труд необходим для сбора и сброса ловушек каждый день в течение четырех-семи месяцев из год.Доступна дополнительная информация о выращивании красных болотных и зеленых прудовых раков. в информационном листе OCES под названием «Crawfish Update».

 

австралийских рака, рекламируемых как «маррон» или «пресноводный лобстер», были доступны. несколько лет в этой стране. Насколько известно автору, не коммерческий достигнуто успешное производство.Такие экзотические раки, вероятно, будут восприимчивы к широко распространенной раковой чуме, к которой, по-видимому, относятся наши аборигенные виды. стойкий.

 

Лягушки

Лягушки востребованы как в пищу, так и для биологических исследований. Лягушачьи лапки, которые вы видите на рынке, принадлежат диким лягушкам, прилетающим издалека. Бангладеш.Разведение лягушек носит экспериментальный характер. Каждая стадия роста требует близкого внимание и другой тип производственного объекта. Сообщается, что взрослые лягушки употреблять пищу только в том случае, если она движется. Это привело к некоторым чрезвычайно инновационным и трудовым интенсивные методы, включая подвешивание пищевых шариков из конского волоса. Не подтверждено в отчетах говорится, что разведение лягушек может быть осуществимо в Бразилии, где затраты на рабочую силу низки.

 

Гибридный полосатый окунь

Спрос на полосатого окуня и гибридного полосатого окуня высок, особенно на восточном побережье. где сокращается улов в дикой природе, а проблемы загрязнения беспокоят потребителей. Помесь белого и полосатого окуня оказалась отличной рыбой для пруда. и танковая культура.К сожалению, проблемы с производством еще предстоит решить. мальки. До тех пор, пока не будет надежного источника мальков, рекомендуется соблюдать осторожность. Дополнительная информация о мальках гибридного полосатого окуня и производстве пищевой рыбы находится доступно в публикациях SRAC 302 и 303, доступно через добавочный номер вашего округа центр.

 

Веслонос

Интерес к разведению веслоноса или колпицы в основном обусловлен ценами в 30 долларов и выше за фунт ее яиц, которые заменяют иранскую и российскую икру.То Мясо в настоящее время имеет небольшую ценность, но очень хорошо подходит для копчения. Веслонос культура является экспериментальной, поэтому уровень инвестиций должен быть низким. Примерно требуется десять лет, прежде чем самка отложит яйца. Веслонос питается фильтрацией очень мелкая жизнь животных из воды. Производственная система, которая кажется многообещающей заключается в выращивании веслоноса в прудах для ловли сома в течение двух-трех лет, а затем его зарыблении. в больших прудах или озерах для последующего вылова с помощью методов коммерческого рыболовства.Это имеет еще не тестировался. Есть несколько производителей мальков веслоноса, но производство не надежен. Сообщается, что мальки веслоноса очень восприимчивы к птицам. из-за их привычки плавать вблизи поверхности.

 

Креветка

Морские пенацидные креветки — это роскошная еда, к которой американцы, похоже, постоянно испытывают растущий голод.Чтобы помочь утолить этот голод, крупные корпорации и частные инвесторы построили большие креветочные фермы в Центральной Америке, Южной Америке и Азии, где тропический климат благоприятен. Климат Оклахомы не подходит для креветок-пенеид. которые не переносят температуры ниже 60 F. Выращивание в комнатных аквариумах с подогревом воды кажется непрактичным из-за проблем с каннибализмом.


Вид пресноводных креветок, Macrobrachium rosenbergii , хорошо растет при температуре выше 68 F и солености до восьми частей на тысячу.Головы намного крупнее, чем у морских креветок, а мясо может быть мягче, чем у морских креветок. креветок, что приводит к некоторым маркетинговым трудностям. Потому что смерть наступает при температуре ниже 50 F коммерческий потенциал этого вида в Оклахоме очень низок. Каннибализм делает нецелесообразным выращивание пресноводных креветок в закрытых резервуарах.

 

Молодь спортивной и кормовой рыбы

Производство окуней, синежаберных, гибридных синежаберных и других мальков для зарыбления в частных рыболовных прудах — это проверенная форма аквакультуры, которая практикуется в Оклахоме. в течение многих десятилетий.Дополнительные виды, которые можно выращивать в качестве корма для окуня, включают шад. и миньоны. Производство этих видов связано с естественным нерестом маточного стада. в прудах удаление брудеров и выращивание мальков на месте. Потому что производство мальков требует большой осторожности и умения, не рекомендуется тем, у кого нет опыт, полученный при производстве пищевой рыбы. Дополнительная информация о большеротом окуне и кормовое рыбоводство можно найти в публикациях SRAC 200-201 и 140-142.

 

Тилапия

Изначально обитавшие в Африке и на Ближнем Востоке многие виды тиляпии были представлены во всем мире из-за их пригодности для аквакультуры. Тилапия виды имеют превосходное качество мяса, которое многие люди сравнивают с краппи, терпимы плохого качества воды и хорошо растут на кормах с низким содержанием белка.Ведущий Техническая проблема выращивания тилапии заключается в том, что она погибает при понижении температуры до около 50 F. Из-за этого маточное стадо или мальки должны зимовать в отапливаемых крытые резервуары или небольшие пруды, питаемые природной теплой колодезной или родниковой водой. Еще один серьезный проблема в частом воспроизведении. Это приводит к перенаселению прудов и задержке роста, если оставили без контроля. Перспективным видом для культуры является помесь самки нильского тиляпии (Oreochromis niloticus) и самца голубой тиляпии (Oreochromis aureus).Рыба из в этом кроссе почти все самцы, поэтому нежелательного размножения можно избежать. Дальнейшая информация доступен в публикациях SRAC 280-282.

 

Форель и лосось

Разведение форели является основной формой аквакультуры в Айдахо и Миссури, но очень редко сделано в Оклахоме.Разведение лосося хорошо развито в Норвегии, Шотландии и Чили. но все еще находится на начальной стадии в США. Эти холодноводные рыбы обычно растут лучше всего при температуре воды от 55 до 65 F и умирают при приближении температуры 70 F. Воды, отвечающей этому требованию круглый год, в Оклахоме мало. Культура показана и описана радужная форель в прудах в зимние месяцы. в публикации Лэнгстонского университета «Садковое выращивание радужной форели.» Поскольку количество оклахомцев, знакомых с форелью, ограничено, некоторые производители с умом принимают заказы для форели, прежде чем они купят мальков. В настоящее время проводятся исследования определить потенциал зимнего разведения лосося в Оклахоме.

 

Какую производственную систему использовать?

Больше всего рыбы в США.С. добывают в гладкодонных прудах, заполненных скважинами, производящими порядка 1000 галлонов в минуту. Потому что такие водные ресурсы здесь редкость, Производители рыбы из Оклахомы обращают внимание на множество различных производственных систем. Производство система, которая лучше всего подходит для вашей ситуации, будет зависеть от доступного источника воды. Существующие озера и пруды часто подходят для садкового выращивания. Колодцы, резервуары и ручьи можно использовать для наполнения прудов с гладким дном.Родники или самотек из резервуара может использоваться для резервуаров с непрерывным потоком и каналов.

 

Клетки

Садковое выращивание заключается в содержании мальков в плавучих садках и последующем их кормлении. полноценное диетическое питание. Обычно подходят рыбы, которые будут брать кормовые гранулы. для выращивания в плавающих садках.Сюда входят канальный сом, радужная форель, тилапия, и полосатый окунь. Основным преимуществом садкового выращивания является то, что оно требует гораздо меньше начальные затраты по сравнению с другими производственными системами. Клетки хорошо работают для многих людей на небольшие масштабы, но у них есть несколько проблем, которые необходимо понять, прежде чем делать крупная инвестиция.

 

Выбор пруда или озера имеет решающее значение.Избегайте прудов, которые меньше, чем одна поверхность акр, очень глубокий или более чем на одну треть покрыт водными растениями. Также избегайте прудов которые имеют темно-зеленый цвет из-за большого количества микроскопических растений, известных как фитопланктон.

 

Количество производимой рыбы должно быть низким. Если более 1000 фунтов рыбы производится на акр поверхности пруда или если более 30 фунтов корма на акр поверхности в день скармливается, то рыбы, скорее всего, погибнут из-за нехватки кислорода.

 

Болезни могут быстро распространяться через садок с рыбой и с трудом поддаются лечению химические вещества. Из-за этого рекомендуется использовать много маленьких клеток вместо нескольких больших. Заболевания, вызванные стрессом, распространены, когда рыба содержится в садках в течение зимы. месяцев, что затрудняет круглогодичное производство.

 

Водоросли («мох») или пресноводные губки иногда растут на клетках, требующих утомительной чистки с толкающей метлой.

 

Чтобы быть успешными, садковыми операциями должен руководить хороший менеджер, который понимает все пунктов выше плюс регулярно следит за состоянием качества воды в своем озере поэтому проблемы можно предвидеть заранее.Когда качество воды в озере ухудшается до момента, когда рыба умирает, обычно уже слишком поздно что-либо делать. Хороший корм, Высококачественная молодь и правильный водоем необходимы для садкового выращивания. Дальше информация о садковом выращивании доступна в публикациях SRAC 160-165, доступных через вашего окружного информационного центра и в публикациях Лэнгстонского университета под названием «Малый Масштабирование садкового выращивания рыбы» и «Проблемы садкового выращивания сома.”

 

Пруды

Разведение рыбы в прудах включает зарыбление в специально спроектированных прудах, заполненных стоячими вода. Это хорошо зарекомендовавший себя и надежный способ выращивания рыбы при правильном управлении. Практически все виды, пригодные для аквакультуры, можно выращивать в прудах со стоячей водой.Пруды в целом оказались наиболее экономичным способом выращивания рыбы и способ получить наибольшую продукцию рыбы на единицу доступной воды.

 

Отходы, производимые рыбой, остаются в пруду, где они разлагаются фитопланктоном и бактерии. Если рыбу зарыбляют и кормят интенсивно, уровень отходов может быть высоким. что приводит к чрезмерному росту водорослей и периодическим низким уровням кислорода.Гладкое дно строительство прудов, предназначенных для рыбоводства, стоит от 2000 до 3000 долларов за акр поверхности. Такие пруды используются для производства от 2000 до 5000 фунтов рыбы на поверхность. акров в год в зависимости от вида и уровня управления. Если источник воды источник или колодец, требуется минимум 25 галлонов в минуту потока на акр поверхности. Когда водопровод представляет собой резервуар, он должен иметь не менее трехкратного вместимость пруда, который он предназначен для заполнения.

 

Как и при садковом выращивании, регулярная программа мониторинга содержания растворенного кислорода и другой воды Переменные качества важны, но рыба, выращенная в пруду, может выжить при многих условиях качества воды. проблемы, которые убили бы рыбу в клетке.

 

Системы непрерывного потока

Каналы, резервуары или пруды, через которые постоянно течет новая вода, называются непрерывными. проточные системы.Каналы — это длинные каналы, обычно сделанные из бетона или построенные другими способами. просто передвигая землю. Резервуары обычно строят из стеклопластика или бетона. Они может быть как прямоугольной, так и круглой формы. Производство большого количества рыбы в такие системы технически проверены, но неэкономичны во многих ситуациях. Форель наиболее распространенная рыба, выращиваемая в системах с непрерывным потоком, но большинство видов культивируемых рыба тоже подойдет.

 

Система рециркуляции

Системы внутренних резервуаров, в которых вода фильтруется и используется повторно, называются рециркуляционными. системы. Наиболее распространенными видами, которые люди пытаются культивировать в этих системах, являются тилапия и сом. Системы рециркуляции обещают круглогодичное производство рыбы. как в местах, близких к основным рынкам, так и там, где водоснабжение ограничено.У них есть разрабатывался около 20 лет, но все еще должен считаться высоко экспериментальный. Суть технической проблемы заключается в преобразовании образующихся отходов рыбой в менее токсичные формы. В большинстве систем используется фильтрующий слой Nitrosomonas и Бактерии Nitrobacter для выполнения этого процесса. К сожалению, эти биофильтры часто умирают неожиданно и могут быть убиты лечением болезней рыб.Интенсивная вода необходима программа контроля качества, наряду с системами резервного копирования, которые могут быстро промыть новую воду через систему в аварийной ситуации. Иногда неприятный привкус передается рыбам в этих системах за счет соединений, продуцируемых актиномицетами (грибами). Многие считают, что рециркуляционные системы — это рыбные фермы будущего. но очень немногие утверждают, что они осуществимы сегодня.

 

Планирование предприятия аквакультуры

Прочитав приведенную выше информацию, вы обдумали множество вариантов. Чтобы сузить их и, наконец, прийти к подробному плану для одной производственной системы, вам нужно будет прочитать как можно больше информации, а затем посетить аквакультуру Специалисты по распространению знаний и опытные рыбоводы.Когда вы это сделаете, вам будет полезно если вы помните некоторые ключевые вопросы (таблица 2).

 

Таблица 2. Важные вопросы, которые следует задать себе при планировании предприятия аквакультуры. если ты ответьте «нет» или «не уверен» на вопрос, вам следует провести дополнительное расследование, прежде чем инвестировать значительные деньги.

       
Является ли тип аквакультуры, который я рассматриваю, испытанным и проверенным? Да Не уверен
Будет ли работать в этом климате? Да Не уверен
Достаточно ли воды? Да Не уверен
Есть ли на моем участке подходящие почвы и уклон? Да Не уверен
Умею ли я разводить животных? Да Не уверен
Могу ли я время от времени выполнять тяжелую физическую работу? Да Не уверен
Обладаю ли я навыками, необходимыми для эксплуатации и обслуживания тракторов или другого необходимого оборудования? Да Не уверен
Смогу ли я справиться со стрессом от потери большого количества рыбы время от времени? Да Не уверен
Готов ли я изучить основные методы проверки качества воды, а затем проводить регулярные проверки? график мониторинга качества воды? Да Не уверен
Если нет устоявшегося рынка для того, что я планирую производить, готов ли я работать с индивидуальными покупателями? Да Не уверен
Достаточно ли низка моя расчетная стоимость производства, чтобы обеспечить приемлемую прибыль? Да Не уверен
Могу ли я получить необходимые разрешения? (См. информационный лист OSU под названием «Разрешения и правила Влияет на производителей рыбы в Оклахоме»). Да Не уверен
Способна ли моя личная или фермерская экономическая ситуация справиться с дополнительным риском? Да Не уверен

 

Как продать то, что я произвел

Настало время решить, как продавать ваш продукт, на этапах планирования, не после того, как у вас есть пруд, полный рыбы.У большинства рыбоводов Оклахомы более один из способов продать рыбу, которую они производят. В таблице 3 перечислены большинство точек сбыта. вы должны рассмотреть. Одной из успешных стратегий была продажа как можно большего количества рыбы напрямую. потребителю, а затем использовать переработчиков или оптовых покупателей, чтобы избавиться остатка.

 

Некоторые рыбоводы любят встречаться с отдельными клиентами и стараются удовлетворить их потребности. требования.Другие предпочли бы не иметь дело с людьми. Ваша симпатия или нелюбовь к работе с отдельными клиентами имеет большое влияние на то, какие рынки сбыта вам следует рассмотреть. Другим важным фактором, который следует учитывать, является то, сколько вам будет стоить производство фунта рыбы. Чтобы определить это, составьте бюджет предприятия, учитывающий все производственные затраты. в учетную запись. Вы должны учитывать больше, чем просто затраты на корм и мальков.Помощь при подготовке бюджетов доступна из источников, перечисленных в конце этого факта лист. Более подробная информация о том, как продавать продукцию аквакультуры, содержится в SRAC. публикация 350.

 

Таблица 3. Общие торговые точки для продуктов аквакультуры и некоторые соответствующие комментарии к ним.

Продажа ферм напрямую потребителю: Если планируется продавать живую рыбу, необходимы резервуары для выдержки. Если продавать разделанную рыбу, требуется медицинская справка. Клиенты будут вторгаться в неурочные часы.
Фермерские рынки: Обычно требуется цистерна для пикапа.
Продуктовые магазины: Рыба должна быть обработана. Конкуренция со стороны крупных процессоров всегда вызывает беспокойство.
Платные рыболовные операции: Рыба должна быть в состоянии кончика. Цена на крупную рыбу может быть выше. Грузовик в общем нужно.
Рестораны: Рыба должна быть обработана.Требуются равномерные порции и регулярные поставки. Опасность конкуренция со стороны крупных процессоров.
Процессоры: Принимает большие количества, но обычно платит самую низкую цену любого покупателя.
Транспортеры для живой рыбы: Обычно имеют дело только с крупными хозяйствами.

 

Финансирование предприятия аквакультуры

За пределами основных регионов производства сома Миссисипи, Арканзаса и Алабамы, трудно получить финансирование для аквакультуры. Наиболее успешная стратегия для большинство людей использует личные средства для запуска пилотного проекта в течение нескольких лет.Финансовые записи этой операции затем можно использовать в качестве основы для бизнеса. план подается в банк. Информация о том, как составить бизнес-план аквакультуры можно получить у специалиста по аквакультуре OCES, указанного в конце этой публикации.

 

На момент публикации кредиты с низкой процентной ставкой, предназначенные для альтернативного сельского хозяйства были доступны фермерам Оклахомы в рамках кредитной программы Ag-Link.Информация о эта программа доступна в вашем окружном информационном центре OCES. Кроме того, кредиты для аквакультуры возможны через Администрацию малого бизнеса (SBA) и Администрация фермерских домов (FmHA). Местные коммерческие банки — ваш контакт для получения кредитов Ag-Link и SBA. FmHA выдает кредиты только тогда, когда вы не можете получить кредит из других источников по разумным ставкам.

 

Несколько последних советов

В ходе работы с сотнями людей, заинтересованных в развитии аквакультуры предприятий, автор пришел к двум советам, которые он хотел бы передать вам сейчас.

 

Подражание, а не инновации — ключ к успеху начинающих аквакультуристов.Проверенный вид и тип производственного объекта почти всегда лучший выбор. Несколько новых рыбоводы могут позволить себе время или деньги, необходимые для экспериментальных систем.

 

Начните с малого и учитесь по мере роста. Независимо от того, насколько хорошо вы планируете свое аквакультурное предприятие, вы многому научитесь в течение первых нескольких лет работы.Начиная с малого позволит вам гибко улучшать свои возможности и время для развития вашего рынках, сводя к минимуму риск.

 

Глоссарий

Водоросли – Простые водные растения. Нитевидные водоросли («мох») — один из видов, который может вызывать проблемы. выращивая на садках или образуя большие маты, которые засоряют неглубокие участки пруда.Фитопланктон это еще один вид водорослей.

 

Бактерии – Микроскопические животные. Некоторые ответственны за гниение животных и растительных отходов, другие являются возбудителями болезней.

 

Маточное стадо или производители – Взрослые животные, используемые для производства потомства.

 

Процент отделки – Процент животного, который остается после головы, внутренних органов, чешуи или другие части тела удаляются путем обработки.

 

Коэффициент конверсии корма – Фунтов корма, необходимого для производства одного фунта животного.Например, если два фунта корма было использовано для производства одного фунта рыбы, коэффициент конверсии корма составил 2,0.

 

Сеголетки – Стадия жизни рыбы, обычно от одного дюйма в длину до одного года.


Мальки – Стадия жизни рыбы, как правило, от вылупления до одного дюйма в длину.

 

Перевозчики живой рыбы — Лица, зарабатывающие на жизнь перевозкой живой рыбы с рыбных ферм в места такие как платные рыболовные операции, перерабатывающие заводы и другие рыбные фермы.

 

Фитопланктон – Микроскопические растения, свободно плавающие в воде и обычно придающие пруду зеленый цвет.В светлое время суток фитопланктон является основным производителем растворенного кислорода в пруды. Ночью происходит обратный процесс, и фитопланктон расходует кислород.

 

Выращивание – Действия по контролю условий, чтобы мальки могли успешно вырасти до мальков. Выращивающий или выростной пруд используется для получения мальков на инкубаторной ферме.

 

Соленость – Мера солености воды. Морская вода имеет соленость около 32 частей на тысяча (ppt).

 

Нерест – Выделение яиц и спермы маточным стадом для производства оплодотворенных яиц.Некоторые виды размножаются естественным образом на рыбных фермах, другим необходимо вводить гормоны и яйцеклетки и сперму удаляют вручную.

 

Качество воды – Степень пригодности воды для разведения водных животных. Высокие уровни растворенного кислорода и низкий уровень вредных веществ, таких как аммиак и нитриты обеспечить хорошее качество воды.

 

Источники дополнительной информации

Ваш окружной центр распространения знаний OCES
Районный специалист по аквакультуре
Окружной офис расширения OSU
P.O. Box 1378 Ada, OK 74820
405) 332-4100

 

Проект рыбоводства Университета Лэнгстона
P.O. Box 730 Langston, OK 73050
(405) 466-3836

 

Клерк по публикациям
Экспериментальная станция рыбного хозяйства
Служба рыболовства и дикой природы США
P.O. Box 860 Stuttgart, AR 72160-0860

 

Марли Бим
Региональный специалист по аквакультуре

Была ли эта информация полезной?
ДА НЕТ

Пилотная система рециркуляции поддерживает развитие разведения омаров в Норвегии

Асбьёрн Дренгстиг, М.наук Доктор Асбьёрн Бергхайм

Норвежская омаровая ферма, тесты, документы, 6 технологий культивирования

Новая система культивирования предназначена для рециркуляции раствора с использованием подогретой морской воды и компьютерного управления.

Европейский омар ( Homarus gammarus )  является одним из самых ценных морепродуктов в мире и имеет мировой рынок. Лобстеров относительно легко выращивать в аквакультуре, и их биология довольно хорошо изучена.

Основным ограничением аквакультуры омаров были высокие производственные затраты из-за потребности в воде с температурой от 18 до 22 градусов Цельсия для получения приемлемых темпов роста, а также необходимость в отдельных отсеках для выращивания, чтобы избежать каннибализма и неравномерных темпов роста из-за иерархии.Отсутствие высококачественных комбикормов также является сдерживающим фактором.

Однако за последнее десятилетие рост цен на омаров и разработка новой технологии рециркуляции сделали омаров более многообещающим кандидатом для аквакультуры замкнутого цикла. Кроме того, новый закон, гарантирующий права собственности на морских омаров, способствовал возможности массового производства молоди лобстеров для морского разведения.

Инкубаторий омаров Kvitsøy

Единственный в Норвегии инкубатор омаров расположен на острове Квитсёй на юго-западе Норвегии.В 2000 году компания Norwegian Lobster Farm инициировала проект по оценке потенциала коммерческого производства омаров размером с тарелку длиной 20 см и весом 300 граммов. Все испытания были проведены в довольно небольшом масштабе, чтобы выявить и решить основные биологические, технические и рыночные узкие места перед коммерциализацией.

Технология выращивания лобстеров

Идеальная система индивидуального выращивания омаров должна быть относительно недорогой в конструкции и эксплуатации, простой в обслуживании и основываться на автоматической подаче и самоочистке резервуаров и клеток.Также необходимо поддерживать идеальные условия качества воды, обеспечивать высокую плотность, экономить воду при высоких температурах, обеспечивать хорошую выживаемость и обеспечивать легкий доступ к домашнему скоту для осмотра и кормления.

Норвежская омаровая ферма

Омары, выращенные на корме из трески, имели плохую окраску. Добавление астаксантина в состав корма привело к тому, что скорлупа приобрела цвет от синего до черного.

Американские исследователи сообщили в 1995 году, что ни один из успешных проектов не включал все эти функции в одном дизайне.Однако за последние пять лет Norwegian Lobster Farm протестировала и задокументировала шесть различных технологий выращивания омаров с целью разработки экономически эффективных решений для выращивания с использованием рециркуляции нагретой морской воды. В результате этой работы Norwegian Lobster Farm запатентовала технологию выращивания, которая включает в себя все необходимые предпосылки для успешного выращивания в одном фермерском хозяйстве.

Кроме того, теперь роботы дополняют большинство процедур, которые ранее зависели от ручного труда.Концепция включает использование роботов для классификации личиночных стадий, кормления и сбора урожая. Программное обеспечение для обработки изображений используется для определения линек, смертности и времени сбора урожая.

Концепция земледелия успешно тестировалась в течение последних девяти месяцев. В настоящее время компания коммерциализирует результаты и вскоре начнет строительство первой крупной фабрики по производству омаров в Европе на острове Квитсой.

Разработка корма

Norwegian Lobster Farm также разработала рецептуру корма, специально разработанную для европейских омаров (таблица 1).В первоначальных испытаниях корма всех омаров кормили обычным кормом для трески. В результате у большинства лобстеров была бледная пигментация из-за отсутствия пигмента в этом корме.

Drengstig, Химический состав и питательная ценность кормов, Таблица 1

Ингредиент Процент
Белок 54,7
Липид 15,6
Углеводы 13,6
Ясень 9.5
Вода 6,8
Энергия (МДж/кг) 21,6
Таблица 1. Химический состав и питательность корма (% сухого вещества).

 

Было легко наблюдать изменения цвета и толщины панциря после введения нового корма для омаров. После первой и второй линьки омары превратились из белых в синих и, наконец, в черных.

Норвежская омаровая ферма впервые за два года произвела лобстеров размером с тарелку, выращенных исключительно на специальной диете (включая личиночные стадии).Коэффициент конверсии корма находился в диапазоне от 1,00 до 1,14 кг корма на килограмм привеса.

Качество воды

Программное обеспечение для обработки изображений используется для определения линек, смертности и времени сбора урожая.

Желательные уровни качества воды для клешневых омаров: температура от 18 до 22 градусов Цельсия, соленость от 28 до 35 частей на миллион, содержание кислорода более 6 мг на литр, рН от 7,8 до 8,2 и содержание азота менее 14 мкг на литр. неионизированный аммиак. В течение коротких периодов омары переносят значительно более низкие концентрации кислорода и более высокие концентрации аммиака, чем это желательно.

Концентрация аммиака является наиболее ограничивающим параметром в системах рециркуляции морской воды. В Kvitsøy биофильтр эффективно удаляет общий аммиачный азот (TAN) со скоростью от 50 до 70 процентов. В первоначальных испытаниях концентрации неионизированного аммиака в резервуарах находились в диапазоне от 0 до 5 мкг азота на литр. Из-за низкой загрузки биомассы использовалась лишь незначительная часть емкости биофильтра. Корм для омаров богат белком, и скорость выделения аммиака у животных соответственно высока.Сообщалось о средних показателях от 0,1 до 0,5 граммов TAN на килограмм в день для взрослых омаров.

(Примечание редактора: эта статья была первоначально опубликована в печатном выпуске Global Aquaculture Advocate за февраль 2005 г.)

Теперь, когда вы закончили читать статью…

… мы надеемся, что вы поддержите нашу миссию по документированию эволюции мировой индустрии аквакультуры и еженедельно делитесь обширными знаниями нашей обширной сети участников.

Став участником Global Seafood Alliance, вы гарантируете, что вся предконкурсная работа, которую мы выполняем с помощью преимуществ, ресурсов и мероприятий для участников, может продолжаться. Индивидуальное членство стоит всего 50 долларов в год.

Не член GSA? Присоединяйтесь к нам.

Поддержите GSA и станьте участником
Похожие сообщения

Аквафидс

Взгляд на фосфолипиды в аквакормах

Фосфолипиды являются основными составляющими клеточных мембран и жизненно важны для нормального функционирования каждой клетки и органа.Включение в состав аквакормов фосфолипидов обеспечивает усиление роста, лучшую выживаемость и стрессоустойчивость, профилактику деформаций скелета личиночных и ювенильных стадий рыб и моллюсков.

Ответственность

Инкубаторное производство лангустов

Колючие лангусты — это морепродукты премиум-класса, выращивание которых зависит от посадочного материала, выловленного в дикой природе.Австралийская компания помогает изменить парадигму ведения сельского хозяйства на более устойчивое инкубаторное производство.

Инновации и инвестиции

Биржа аквакультуры: Билл Херциг

Глобальный альянс аквакультуры наградит эксперта по закупкам морепродуктов Билла Херцига премией за выслугу во время своей ежегодной конференции GOAL.Он поговорил с Advocate о полной приверженности принципам устойчивого развития и об амбициозном проекте по разведению омаров, который он возглавил в Малайзии вместе с Darden Restaurants.

Воздействие повышенной скорости воды на инвазивных ржавых раков (Orconectes rusticus Girard, 1852) в лабораторном мезокосме | Журнал биологии ракообразных

Аннотация

Инвазии ржавых раков Orconectes rusticus (Girard, 1852) в озера привели к локальному истреблению оседлых раков и изменению прибрежных сообществ.Распространение O. rusticus в ручьях представляет не менее серьезную угрозу биоразнообразию местных раков и рыб. Мы обнаружили, что O. rusticus в ручьях северного Висконсина были значительно меньше, чем O. rusticus из озер ( P < 0,001) и незначительно отличались от Faxonius propinquus (Girard, 1852) ( P < 0). ) из озер или ручьев. Мы проверили время достижения ограниченного пищевого ресурса, производительность при 4 скоростях воды, 5, 30, 50 и 66 см с 90 900 –1 90 901 , в лабораторном лотке.Показатели O. rusticus и F. propinquus не отличались в пределах скоростей воды, но снижались при скоростях воды 50 и 66 см с –1 . Показатели также не отличались между крупными и мелкими O. rusticus в условиях воздействия скорости воды, но также снижались при 50 и 66 см/с –1 . Однако эффективность O. rusticus и F. propinquus из озер была значительно ниже, чем у O. rusticus из ручьев ( P < 0.05). Во всех экспериментах продуктивность раков при обработке 66 см с 90 900 –1 90 901 была ниже 50 %, что позволяет предположить, что это критическая скорость воды для 90 149 O. rusticus 90 150 и 90 149 F. propinquus 90 150 . Наши результаты также показывают, что участки потока с высокой скоростью могут снизить скорость распространения 90 149 O. rusticus 90 150 вверх по течению из озер, тем самым потенциально уменьшая распространение в верхние озерные экосистемы.

ВВЕДЕНИЕ

Распространение неаборигенных пресноводных видов представляет серьезную угрозу для местных видов и изменяющихся водных экосистем во всем мире (Gurevitch & Padilla, 2004; Strayer, 2010).Исследования расселения неаборигенных видов со свободно плавающей стадией жизни выявили множество факторов, ограничивающих расселение после укоренения (Johnson & Carlton, 1996; Hrabik & Magnuson, 1999; Kocovsky et al. , 2011). Напротив, расселению бентосных видов, не находящихся на стадии свободного плавания, уделялось относительно мало внимания, хотя эти виды могут оказывать аналогичное воздействие на захваченные экосистемы (Covich et al. , 1999; Schreiber et al. , 2003; Bohonak & Дженкинс, 2003; Хоффман и др., 2006 г.; Сепульведа и Марчак, 2012). Раки часто считаются высшими потребителями или инженерами экосистем в ручьях и озерах и способны контролировать структуру и функции экосистем этих систем (Olsen et al. , 1991; Charlebois & Lamberti, 1996; Lodge et al. , 1998). ; Covich и др. , 1999; Hill & Lodge, 1999; Lodge и др. , 2000; Nystrom и др. , 2001). Основным источником интродукции раков может быть продажа наживки и аквариумов (DiStefano et al., 2009 г.; Мругала и др. , 2014). В озерных районах на севере Среднего Запада США интродукция раков, вероятно, происходит в озерах с последующим распространением в ручьях (Byron & Wilson, 2001; Puth & Allen, 2005; Foster & Keller, 2011).

На распространение в озерах неаборигенных раков, таких как ржавый рак, Orconectes rusticus (Girard, 1852), влияет сочетание абиотических и биотических факторов. Распространение раков после укоренения в озерах ограничено прибрежной зоной с ограниченным распространением через холодные воды с низким содержанием кислорода в гиполимнионе (Wilson et al., 2004 г.; Янсен и др. , 2009 г.). Повышение доступности убежищ, например, булыжника, крупных древесных остатков или макрофитов, приводит к увеличению скорости инвазии, которая может достигать 0,68 км в год –1 (Wilson et al. , 2004). Распространение через прибрежную зону уменьшается в районах, где убежища, образованные булыжником, крупными древесными остатками или макрофитами, ограничены, возможно, из-за риска хищничества рыбы (Kershner & Lodge, 1995). Резидентные виды могут сохраняться в маргинальных местообитаниях, не предпочтительных для O.rusticus после инвазии (Garvey et al. , 2003).

Биотические факторы, влияющие на успешность инвазии O. rusticus в озерах, в первую очередь объясняются большим средним размером по сравнению с жителями (DiDonato & Lodge, 1993; Hill & Lodge, 1995; 1999; Lodge et al. , 2000). Более крупный средний размер раков увеличивает репродуктивную способность самок по сравнению с резидентами, а молодые O. rusticus имеют более высокие темпы роста и более высокую выживаемость (Hill et al., 1993). Соревнуясь за еду и кров, O. rusticus и местный Faxonius propinquus (Girard, 1852) (ранее числившийся как Orconectes propinquus , но недавно помещенный в Faxonius Ortmann, 1905 Crandall & De Grave, 20 ) конкурентно равны, но O. rusticus доминирует, если длина панциря всего на 3 мм больше, чем у F. propinquus (Hill & Lodge, 1999). Риск нападения хищников также снижается по мере увеличения размера раков (Garvey et al., 1994; Хилл и Лодж, 1999). Размер может быть определяющим фактором, объясняющим успех O. rusticus и других раков при инвазиях в озера.

Инвазия раков в ручьях может отличаться от озер, при этом большее значение имеют абиотические факторы по сравнению с биотическими факторами. Абиотические силы, особенно течение и состав субстрата, сильно влияют на успешность инвазии интродуцированных рыб и раков, как, например, Pacifastacus leniusculus (Dana, 1852) в ручьях Европы и Северной Америки (Moyle & Light, 1996a; 1996b; Light, 2003; Bubb). и др., 2004 г.; Маркетти и др. , 2004 г.; Леприер и др. , 2006 г.; Propst и др. , 2008 г.; Кларк и др. , 2013). Высокое течение часто снижает способность раков к расселению вверх по течению и, вероятно, ограничивает численность вселенцев (Light, 2003; Bubb et al. , 2006; Cruz & Rebelo, 2007). Сильные течения могут изменять субстраты и уменьшать воздействие чужеродных раков на добычу за счет снижения численности захватчиков и могут ограничивать успех вторжения (Poff & Ward, 1989; Moyle & Light, 1996a, b; Gamradt & Kats, 1996; Light, 2003; Kerby). и др., 2005 г.; Маркетти и Мойл, 2010). В Европе барьеры для раков позволили пелагическим рыбам мигрировать вверх по течению, но уменьшили расселение донных рыб и раков (Frings et al. , 2013). На движение донных рыб и раков вверх по течению влиял не уклон или неровность барьера, а критическая скорость течения (0,65 см с –1 ) (Frings et al. , 2013). В исследованиях ручьев была обнаружена отрицательная корреляция между скоростью течения рек и численностью F.propinquus (Кутка и др. , 1996). Воздействие водопропускных труб на раков не обязательно создавало барьеры, но повышенная скорость течения изменяла поведение раков и в некоторых случаях замедляла и, возможно, предотвращала движение вверх по течению (Puth & Allen, 2005; Foster & Keller, 2011). Таким образом, повышенные скорости в сочетании с характеристиками субстрата могут быть ключевыми факторами, влияющими на скорость и успех инвазии.

Проводя исследования в озерах и ручьях в северном Висконсине и Верхнем полуострове Мичигана, мы заметили, что O.rusticus были менее распространены в более высоких потоках и часто отсутствовали выше по течению от водопропускных труб или участков с повышенной скоростью воды (WLP, личные наблюдения). Мы также заметили, что O. rusticus в ручьях казались меньше, чем O. rusticus в озерах, особенно с редким субстратом и высокой скоростью течения. Мы предположили, что повышенные скорости могут влиять как на расселение вверх по течению, так и на частотное распределение размеров O. rusticus . Основываясь на этих наблюдениях, мы экспериментально проверили гипотезу о том, что размеры соответствуют O.rusticus и F. propinquus различались по своей способности работать при повышенных скоростях воды. Затем мы проверили, влияет ли размер O. rusticus на производительность в потоке. Наконец, мы проверили, отличаются ли O. rusticus и F. propinquus из озер от O. rusticus из ручьев по своей способности справляться с повышенными скоростями воды.

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

Сравнение частотного распределения размеров в озерах и ручьях

Чтобы проверить различия в размерах особей раков между популяциями озер и ручьев, мы измерили длину панциря раков, равную O.rusticus из 12 озер и 13 ручьев и F. propinquus из 6 озер и 5 ручьев летом 2003–2005 гг. (табл. 1). Длину панцирей измеряли с точностью до 0,1 мм с помощью цифровых штангенциркулей Mitutoyo (Mitutoyo, Aurora, IL, USA) и регистрировали пол и репродуктивную форму. Самцы раков чередуются между нерепродуктивной формой (форма II: гоноподы негибкие и белые) в начале лета и репродуктивной формой (форма I: гоноподы нитевидные и часто оранжевые) с конца лета до весны.Мы использовали смешанный двусторонний дисперсионный анализ с фиксированными эффектами вида ( O. rusticus или F. propinquus ), пола (самец и самка), типа среды обитания (озеро или ручей) и места (ручей). или озеро) как случайный эффект. Все статистические анализы длины панциря проводились с использованием пакетов R (R Core Team, 2017), car (Fox & Weisberg, 2011) и nlme (Pinheiro et al. , 2017). Попарные сравнения средних по методу наименьших квадратов проводились с поправкой Бонферрони с использованием пакета LSMEANS (Lenth, 2016).

Таблица 1.

Места сбора Faxonius propinquus и Orconectes rustics .

9 0 O 37′ o 17′ 0 O 04′ 0 O 07′ 0 O 39′ 0 O 15′ 0 O 13′ 0 O 06′ 0 O 59′ 0 O 31′ o 01′ o 28′ 900 49 0 O 35′ 0 O 02′ 0 O 29′ o 20′ 0 O 57′ 1 23′ 0 O 39′ O 06′ 0 O 48′ 0 O 59′ 0 O 33′ o 09′ 0 O 38′ O 10′
Виды . Местоположение . лат. (Н) . Длинный. (Вт) . Количество собранных особей .
Faxonius Propinquus Озеро Аллеш 46 o 02′ 89
47
Little John Lake, Wi 46 ° 00′ 89 ° 38′ 89 ° 38′ 39
длинного озера, Wi 45 ° 20′ 88 ° 20′ 51
51
Озеро сливы, Wi 45 O 59′ 89 O 31» 10
Южная Черепаха, Wi 46 ° 12′ 89 ° 5′ 49 °
49
Форель Озеро, Wi 46 ° 01′ 89 ° 40 99 99
Allequash Creek, Wi 46 ° 01′ 89 ° 39′ 57
Cisco филиал Онтонаго N River, Mi 46 89
42 Manitowish River, Wi 46
89
47
Mill Creek, MI 42 ° 09′ 86
36
Plum Creek, Wi 45 ° 58′ 89 ° 32′ 70
OrconExtes Rusticus Big Lake, Wi 46 ° 09′ 89 ° 09′ 21
Березовое озеро, Wi 46
89 O 50′ 22
Bond Falls Flowage, MI 46 O 23′ 89
18
Little John L ake, wi 46 ° 00′ 89 ° 39′ 19 46 ° 10′ 89 ° 4 48′ 20
Slum Lake, Wi 45 O 45
89
50 50 премиссивного острова Озеро, Wi 46 ° 13′ 89 ° 7′ 33
Star Lake, Wi 46 89 28 Южная Черепаха Озеро, Wi 46 ° 12′ 89 ° 5′ 32
озеро Форель, Wi 46 ° 01′ 89 ° 40′ 265′
Van Vliet Lake, WI 46 O 11′ 89 O 45′ 31
Белый песчаный озеро, Wi 46 O 05′ 89
20
Allequash Creek, Wi 46 ° 01′ 89 ° 39′ 31
Bank Lick Creek, KY 39
84
19
Big Blue Blue, в 39 85 O 59′ 19 19
Brandywine Creek, MI 41 O 23′ 16
Вишневый вилкий Creek, OH 38 O 55′ 83 83
51
Cisco Филиал на реке Энтонгон, MI 46 ° 21′ 89 ° 04′ 54 9 0060
39 84
50
Manitowish River, Wi 46 O 07′ 89 O 39′ 35
Plum Creek, Wi 45 89
31
Река Средний филиал Онтонгон, MI 46 O 14′ 89 21
Raireie River, Wi 45 O 13′ 89
25
Roselawn Creek, MI 46 O 24′ 89 36
Висконсинская река, WI 44 O 54 ʹ  89 o 29ʹ  42 

9 0 O 37′ o 17′ 0 O 04′ 0 O 07′ 0 O 39′ 0 O 15′ 0 O 13′ 0 O 06′ 0 O 59′ 0 O 31′ o 01′ o 28′ 900 49 0 O 35′ 0 O 02′ 0 O 29′ o 20′ 0 O 57′ 1 23′ 0 O 39′ O 06′ 0 O 48′ 0 O 59′ 0 O 33′ o 09′ 0 O 38′ O 10′
Виды . Местоположение . лат. (Н) . Длинный. (Вт) . Количество собранных особей .
Faxonius Propinquus Озеро Аллеш 46 o 02′ 89
47
Little John Lake, Wi 46 ° 00′ 89 ° 38′ 89 ° 38′ 39
длинного озера, Wi 45 ° 20′ 88 ° 20′ 51
51
Озеро сливы, Wi 45 O 59′ 89 O 31» 10
Южная Черепаха, Wi 46 ° 12′ 89 ° 5′ 49 °
49
Форель Озеро, Wi 46 ° 01′ 89 ° 40 99 99
Allequash Creek, Wi 46 ° 01′ 89 ° 39′ 57
Cisco филиал Онтонаго N River, Mi 46 89
42 Manitowish River, Wi 46
89
47
Mill Creek, MI 42 ° 09′ 86
36
Plum Creek, Wi 45 ° 58′ 89 ° 32′ 70
OrconExtes Rusticus Big Lake, Wi 46 ° 09′ 89 ° 09′ 21
Березовое озеро, Wi 46
89 O 50′ 22
Bond Falls Flowage, MI 46 O 23′ 89
18
Little John L ake, wi 46 ° 00′ 89 ° 39′ 19 46 ° 10′ 89 ° 4 48′ 20
Slum Lake, Wi 45 O 45
89
50 50 премиссивного острова Озеро, Wi 46 ° 13′ 89 ° 7′ 33
Star Lake, Wi 46 89 28 Южная Черепаха Озеро, Wi 46 ° 12′ 89 ° 5′ 32
озеро Форель, Wi 46 ° 01′ 89 ° 40′ 265′
Van Vliet Lake, WI 46 O 11′ 89 O 45′ 31
Белый песчаный озеро, Wi 46 O 05′ 89
20
Allequash Creek, Wi 46 ° 01′ 89 ° 39′ 31
Bank Lick Creek, KY 39
84
19
Big Blue Blue, в 39 85 O 59′ 19 19
Brandywine Creek, MI 41 O 23′ 16
Вишневый вилкий Creek, OH 38 O 55′ 83 83
51
Cisco Филиал на реке Энтонгон, MI 46 ° 21′ 89 ° 04′ 54 9 0060
39 84
50
Manitowish River, Wi 46 O 07′ 89 O 39′ 35
Plum Creek, Wi 45 89
31
Река Средний филиал Онтонгон, MI 46 O 14′ 89 21
Raireie River, Wi 45 O 13′ 89
25
Roselawn Creek, MI 46 O 24′ 89 36
Висконсинская река, WI 44 O 54 ʹ  89 o 29ʹ  42 
Таблица 1.

Места, где были собраны Faxonius propinquus и Orconectes rustics .

9 0 O 37′ o 17′ 0 O 04′ 0 O 07′ 0 O 39′ 0 O 15′ 0 O 13′ 0 O 06′ 0 O 59′ 0 O 31′ o 01′ o 28′ 900 49 0 O 35′ 0 O 02′ 0 O 29′ o 20′ 0 O 57′ 1 23′ 0 O 39′ O 06′ 0 O 48′ 0 O 59′ 0 O 33′ o 09′ 0 O 38′ O 10′
Виды . Местоположение . лат. (Н) . Длинный. (Вт) . Количество собранных особей .
Faxonius Propinquus Озеро Аллеш 46 o 02′ 89
47
Little John Lake, Wi 46 ° 00′ 89 ° 38′ 89 ° 38′ 39
длинного озера, Wi 45 ° 20′ 88 ° 20′ 51
51
Озеро сливы, Wi 45 O 59′ 89 O 31» 10
Южная Черепаха, Wi 46 ° 12′ 89 ° 5′ 49 °
49
Форель Озеро, Wi 46 ° 01′ 89 ° 40 99 99
Allequash Creek, Wi 46 ° 01′ 89 ° 39′ 57
Cisco филиал Онтонаго N River, Mi 46 89
42 Manitowish River, Wi 46
89
47
Mill Creek, MI 42 ° 09′ 86
36
Plum Creek, Wi 45 ° 58′ 89 ° 32′ 70
OrconExtes Rusticus Big Lake, Wi 46 ° 09′ 89 ° 09′ 21
Березовое озеро, Wi 46
89 O 50′ 22
Bond Falls Flowage, MI 46 O 23′ 89
18
Little John L ake, wi 46 ° 00′ 89 ° 39′ 19 46 ° 10′ 89 ° 4 48′ 20
Slum Lake, Wi 45 O 45
89
50 50 премиссивного острова Озеро, Wi 46 ° 13′ 89 ° 7′ 33
Star Lake, Wi 46 89 28 Южная Черепаха Озеро, Wi 46 ° 12′ 89 ° 5′ 32
озеро Форель, Wi 46 ° 01′ 89 ° 40′ 265′
Van Vliet Lake, WI 46 O 11′ 89 O 45′ 31
Белый песчаный озеро, Wi 46 O 05′ 89
20
Allequash Creek, Wi 46 ° 01′ 89 ° 39′ 31
Bank Lick Creek, KY 39
84
19
Big Blue Blue, в 39 85 O 59′ 19 19
Brandywine Creek, MI 41 O 23′ 16
Вишневый вилкий Creek, OH 38 O 55′ 83 83
51
Cisco Филиал на реке Энтонгон, MI 46 ° 21′ 89 ° 04′ 54 9 0060
39 84
50
Manitowish River, Wi 46 O 07′ 89 O 39′ 35
Plum Creek, Wi 45 89
31
Река Средний филиал Онтонгон, MI 46 O 14′ 89 21
Raireie River, Wi 45 O 13′ 89
25
Roselawn Creek, MI 46 O 24′ 89 36
Висконсинская река, WI 44 O 54 ʹ  89 o 29ʹ  42 

9 0 O 37′ o 17′ 0 O 04′ 0 O 07′ 0 O 39′ 0 O 15′ 0 O 13′ 0 O 06′ 0 O 59′ 0 O 31′ o 01′ o 28′ 900 49 0 O 35′ 0 O 02′ 0 O 29′ o 20′ 0 O 57′ 1 23′ 0 O 39′ O 06′ 0 O 48′ 0 O 59′ 0 O 33′ o 09′ 0 O 38′ O 10′
Виды . Местоположение . лат. (Н) . Длинный. (Вт) . Количество собранных особей .
Faxonius Propinquus Озеро Аллеш 46 o 02′ 89
47
Little John Lake, Wi 46 ° 00′ 89 ° 38′ 89 ° 38′ 39
длинного озера, Wi 45 ° 20′ 88 ° 20′ 51
51
Озеро сливы, Wi 45 O 59′ 89 O 31» 10
Южная Черепаха, Wi 46 ° 12′ 89 ° 5′ 49 °
49
Форель Озеро, Wi 46 ° 01′ 89 ° 40 99 99
Allequash Creek, Wi 46 ° 01′ 89 ° 39′ 57
Cisco филиал Онтонаго N River, Mi 46 89
42 Manitowish River, Wi 46
89
47
Mill Creek, MI 42 ° 09′ 86
36
Plum Creek, Wi 45 ° 58′ 89 ° 32′ 70
OrconExtes Rusticus Big Lake, Wi 46 ° 09′ 89 ° 09′ 21
Березовое озеро, Wi 46
89 O 50′ 22
Bond Falls Flowage, MI 46 O 23′ 89
18
Little John L ake, wi 46 ° 00′ 89 ° 39′ 19 46 ° 10′ 89 ° 4 48′ 20
Slum Lake, Wi 45 O 45
89
50 50 премиссивного острова Озеро, Wi 46 ° 13′ 89 ° 7′ 33
Star Lake, Wi 46 89 28 Южная Черепаха Озеро, Wi 46 ° 12′ 89 ° 5′ 32
озеро Форель, Wi 46 ° 01′ 89 ° 40′ 265′
Van Vliet Lake, WI 46 O 11′ 89 O 45′ 31
Белый песчаный озеро, Wi 46 O 05′ 89
20
Allequash Creek, Wi 46 ° 01′ 89 ° 39′ 31
Bank Lick Creek, KY 39
84
19
Big Blue Blue, в 39 85 O 59′ 19 19
Brandywine Creek, MI 41 O 23′ 16
Вишневый вилкий Creek, OH 38 O 55′ 83 83
51
Cisco Филиал на реке Энтонгон, MI 46 ° 21′ 89 ° 04′ 54 9 0060
39 84
50
Manitowish River, Wi 46 O 07′ 89 O 39′ 35
Plum Creek, Wi 45 89
31
Река Средний филиал Онтонгон, MI 46 O 14′ 89 21
Raireie River, Wi 45 O 13′ 89
25
Roselawn Creek, MI 46 O 24′ 89 36
Висконсинская река, WI 44 O 54 ʹ  89 o 29ʹ  42 

Влияние скорости воды на производительность в потоке

Чтобы проверить влияние повышенных скоростей воды на раков, мы использовали лабораторный рециркуляционный лоток, в котором время успешного перемещения раков от убежища к источнику пищи замерялось и использовалось в качестве оценки производительности в потоке (рис.1). Раки, использованные в эксперименте, были собраны в озерах и ручьях северного Иллинойса и северного Висконсина в конце лета 2005 г. (табл. 1). Ручьи, из которых собирали раков, имели скорость воды в середине русла примерно 25 см сек –1 с максимальной скоростью воды в районах с более быстрым течением 40 см сек –1 летом. Раки содержались в 15 больших видовых проточных аквариумах (115 л) с избытком укрытий и световым периодом 12:12. Эффект содержания речных раков в непроточных аквариумах не влияет на них в последующих экспериментах (Pecor et al., 2008 г.). Температуру воды поддерживали на уровне 20 90 900 o 90 90 1 С, а скорость движения воды не превышала 5 см с 90 900 –1 90 901 . Раков кормили кормом ad libitum из обогащенного кальцием корма для морских свинок (Teklad GP Diet 7006) (Teklad, Индианаполис, Индиана, США). Раков акклиматизировали в условиях неволи не менее чем за пять дней до экспериментальных испытаний. Ни один рак не содержался в неволе более 45 дней.

Рис. 1.

Рециркуляционная проточная камера, вид сверху ( A ) и вид сбоку ( B ).

Рис. 1.

Рециркуляционная проточная камера, вид сверху ( A ) и вид сбоку ( B ).

Рециркуляционный лабораторный лоток состоял из двух независимых параллельных каналов длиной 157 см и шириной 36 см с коллиматорами (размер ячеек = 1 см) на входном и нижнем концах канала. Глубина воды поддерживалась на уровне 41 см. Вода рециркулировалась через две трубы из ПВХ диаметром 30 см с использованием двух двигателей постоянного тока мощностью ¾ л.Скорость воды можно было регулировать от 0 до 80 см сек –1 . В опытах использовались четыре фиксированные скорости: 5 см с –1 , 30 см с –1 , 50 см с –1 и 66 см с –1 , измеренные в центре лотковых каналов. 2 см над субстратом с помощью расходомера March McBirney Flo-Mate 2000 (Hach, Loveland, CO, USA). Мы также измерили скорость воды в камере и скорость воды в центре: 50% канала находились в пределах 10% от тестируемой скорости воды, и это была область, в которой двигалось больше всего раков.Скорость воды 90 900 –1 90 901 на уровне 33 см/с представляет собой обычно наблюдаемую придонную скорость воды в ручьях, отобранных нами, и близка к скорости скольжения 90 149 O. rusticus 90 150 и 90 149 F. propinquus 90 150 (Maude & Williams, 1983). . Мы использовали скорость воды 50 см с 90 900 –1 90 901, потому что это верхняя летняя скорость в наших исследуемых ручьях с низкой популяцией раков, и скорость воды 66 см с 90 900 –1 90 901, потому что это была скорость, при которой субстрат в лоток не был подвижным, и позже было показано, что он ограничивает рассредоточение водосливов вверх по течению (Frings et al., 2013). Из-за невозможности собрать достаточное количество раков во время эксперимента, мы использовали подмножество этих скоростей в некоторых экспериментах. Субстрат в камере состоял из 10-сантиметрового слоя гравия (средний диаметр 1,5 см) с постепенным уклоном по бокам, чтобы обеспечить равномерную скорость движения воды по камере. Чтобы стандартизировать уровни голода, раки голодали в течение 24 часов (Hill & Lodge, 1999), а затем помещались в экспериментальный канал отверстием вниз по течению и закрывались плексигласовой пластиной до начала опыта.Выше по течению клали ограниченный корм (кусок куриной печени весом 5 ± 0,5 г) и разрешали рачкам выходить из укрытия. Регистрировали время, за которое рак переместился из убежища ниже по течению к источнику пищи выше по течению в течение 60 минут. Первоначальные тесты показали, что способность достигать источника пищи не увеличивалась с увеличением продолжительности испытаний. Каждого рака использовали только один раз, а затем умерщвляли.

Влияние скорости воды на O. rusticus и F.propinquus из потоков

Для проверки видоспецифичных различий во времени, необходимом для успешного достижения пищевого объекта выше по течению, самцы (форма I) O. rusticus и F. propinquus были испытаны на гравийных субстратах. Длина панциря раков (CL), измеренная от кончика рострума до конца панциря, колеблется в пределах 33–36 мм CL. Время, необходимое для достижения источника пищи выше по течению, было протестировано при четырех скоростях воды: 5 см с –1 ( N = 24 O.rusticus , N = 26 F. propinquus ), 30 см сек –1 ( N = 13 O. rusticus и N = 9 см F. propinquus ), см сек – см ( N = 23 O. Rusticus и N = 22 F. Propinquus ) и 66 см SEC -1 ( N = 10 O. Rusticus и N = 5 F. propinquus ).

Сравнение времени, необходимого для достижения пищевого продукта вверх по течению в больших и малых O.деревенский

Для изучения зависимости повышенной скорости воды от размера самца (Форма I) O. rusticus мы определили время, необходимое для достижения источника пищи выше по течению для мелких (17–28 мм CL, N = 32) и крупных ( 34–43 мм CL, N = 32) O. rusticus . Эти категории размеров были на одно стандартное отклонение больше и меньше средних размеров, наблюдаемых в ручьях. Эти испытания проводились в экспериментальном лотке при четырех скоростях воды: 5 см с 90 900 -1 90 901 , 30 см с 90 900 -1 90 901 , 50 см с 90 900 -1 90 901 и 66 см с 90 900 -1 90 901 .

Сравнение времени, необходимого для O. rusticus и F. propinquus из озер с O. rusticus из ручьев для достижения кормового объекта вверх по течению

Для сравнения O. rusticus и F. propinquus из озер с O. rusticus из ручьев по времени, необходимому для достижения кормового объекта вверх по течению, использовались скорости воды 5 см сек –1 , 30 см сек –1 и 50 см сек –1 .Мы не использовали обработку со скоростью воды 66 см с 90 900 –1 90 901 из-за ограниченного количества раков и плохой производительности при этой скорости. Были использованы формы II или нерепродуктивные самцы раков, потому что мы не смогли собрать самцов формы I во время проведения эксперимента. Мы использовали O. rusticus ( N = 32) из ​​озера Литл-Джон и F. propinquus ( N = 32) (26–38 мм CL) из озера Аллекваш и O. rusticus из Аллекваш-Крик. ( N = 24) в трех скоростях воды.В этом эксперименте не использовали F. propinquus из ручьев из-за невозможности найти достаточное количество особей.

Статистический анализ скоростей движения в лотке

Мы использовали пакет выживания R (Therneau, 2017) для выполнения анализа выживания Каплана-Мейера. Анализ выживания позволяет использовать цензурированные данные, наблюдения, в которых интересующее событие (успех в достижении источника пищи) не произошло к концу экспериментального испытания. Мы дали рачкам 60 минут, чтобы добраться до источника пищи, прежде чем испытание было завершено.Отсутствие цензурированных наблюдений может привести к систематической ошибке при проведении сравнений или расчете медиан и 95% доверительных интервалов по функциям временной неудачи, но только в случаях, когда > 50% участников завершили исследование. Доверительные интервалы не являются симметричными из-за включения цензурированных значений. Анализ выживаемости обеспечивает функцию времени отказа доли раков, достигших источника пищи выше по течению. Анализ также позволяет оценить ограниченное среднее значение и стандартную ошибку функции выживания при учете цензурированных данных.Мы использовали пакет R survminer (Kassambara & Kosinski, 2017) для выполнения парного логарифмического рангового теста с поправкой Бонферрони для всех парных комбинаций обработок. Логарифмический ранговый критерий — это непараметрический критерий, используемый для сравнения попарно искаженных вправо и цензурированных данных в функциях выживания.

РЕЗУЛЬТАТЫ

Средний размер раков в ручьях по сравнению с озерами

Было значительное взаимодействие между видами и озером или ручьем (F 1,33 = 8.306, P = 0,0069). Orconectes rusticus из ручьев были значительно меньше, чем O. rusticus из озер ( P <0,05) и незначительно отличались от F. propinquus из ручьев ( P > 0,05) (рис. 2).

Рисунок 2.

Диаграмма в виде прямоугольников и усов, показывающая медиану (горизонтальная линия) и квартили для озер и ручьев, где были собраны Orconectes rusticus и Faxonius propinquus (таблица 1). Orconectes rusticus и F. propinquus самцы в озерах и ручьях. Orconectes rusticus из озер были значительно крупнее O. rusticus из ручьев, а также значительно крупнее F. propinquus из озер и ручьев ( P <0,05).

Рисунок 2.

Диаграмма в виде прямоугольников и усов, показывающая медиану (горизонтальная линия) и квартили для озер и ручьев, где были собраны Orconectes rusticus и Faxonius propinquus (таблица 1). Orconectes rusticus и F. propinquus самцы в озерах и ручьях. Orconectes rusticus из озер были значительно крупнее O. rusticus из ручьев, а также значительно крупнее F. propinquus из озер и ручьев ( P <0,05).

Экспериментальное воздействие скорости воды на O. rusticus и F. propinquus из ручьев

Время, необходимое для того, чтобы раки достигли кормового объекта выше по течению, значительно увеличилось ( P < 0.05) при увеличении расхода воды свыше 30 см с –1 (рис. 3). Раки, как правило, ходили в средней части желоба большую часть времени и не использовали края отчасти из-за гравия, добавленного к краям. Однако не было выявлено существенной разницы ( P > 0,05) между видами раков при обработке скоростью течения воды (рис. 3). Количество подвергнутых цензуре особей резко увеличилось при более высоких скоростях воды: только 2 из 10 90 149 O. rusticus 90 150 и 2 из 5 90 149 F.propinquus достигает источника пищи, что препятствует расчету среднего времени, поскольку менее 50% достигли источника пищи.

Рисунок 3.

Сравнение времени, необходимого Orconectes rusticus и Faxonius propinquus для достижения источника пищи при 4 скоростях воды с использованием вероятности выживания Каплана-Мейера ( A ). Среднее время (± 95% ДИ), в которое 50% особей достигли ограниченного источника пищи ( B ).При более высоких скоростях воды менее 50% раков достигли источника пищи, поэтому медиана не приводится. Попарный тест Log-Rank использовался для проверки значительных различий между группами с использованием скорректированного Бонферрони значения p с использованием пакета survminer (Kassambara & Kosinski 2017).

Рисунок 3.

Сравнение времени, необходимого Orconectes rusticus и Faxonius propinquus для достижения источника пищи при 4 скоростях воды с использованием вероятности выживания Каплана-Мейера ( A ).Среднее время (± 95% ДИ), в которое 50% особей достигли ограниченного источника пищи ( B ). При более высоких скоростях воды менее 50% раков достигли источника пищи, поэтому медиана не приводится. Попарный тест Log-Rank использовался для проверки значительных различий между группами с использованием скорректированного Бонферрони значения p с использованием пакета survminer (Kassambara & Kosinski 2017).

Экспериментальное воздействие скорости воды на большие и малые O.деревенский

Время, необходимое крупным и мелким O. rusticus для достижения ограниченного пищевого ресурса, значительно увеличилось с 5 до 50 и до 66 см с –1 ( P < 0.05) (рис. 4). Однако не было никаких существенных различий между этими размерными классами O. rusticus при обработке скорости воды ( P <0,05). При 66 см сек 90 900 –1 90 901 70% мелких O. rusticus были успешными, тогда как только 45% крупных особей были успешными (рис.4).

Рисунок 4.

Сравнение времени, необходимого крупным (уровень длинны 34–43 мм) и малым (уровень длинны 17–28 мм) Orconectes rusticus для достижения источника пищи при четырех скоростях воды с использованием вероятности выживания Каплана-Мейера ( А ). Среднее время (+/- 95% ДИ), в которое 50% особей достигли ограниченного источника пищи ( B ). При более высоких скоростях воды менее 50% раков достигли источника пищи, поэтому медиана не приводится.Попарный тест Log-Rank использовался для проверки значительных различий между группами с использованием скорректированного Бонферрони значения p с использованием пакета survminer (Kassambara & Kosinski, 2017).

Рисунок 4.

Сравнение времени, необходимого крупным (уровень длинны 34–43 мм) и малым (уровень длинны 17–28 мм) Orconectes rusticus для достижения источника пищи при четырех скоростях воды с использованием вероятности выживания Каплана-Мейера ( А ). Среднее время (+/- 95% ДИ), в которое 50% особей достигли ограниченного источника пищи ( B ).При более высоких скоростях воды менее 50% раков достигли источника пищи, поэтому медиана не приводится. Попарный тест Log-Rank использовался для проверки значительных различий между группами с использованием скорректированного Бонферрони значения p с использованием пакета survminer (Kassambara & Kosinski, 2017).

Экспериментальное воздействие скорости воды на O. rusticus и F. propinquus из озер и ручьев Самец

формы II O. rusticus из ручьев достиг источника пищи значительно быстрее, чем O.rusticus и F. propinquus из озер на 30 и 50 см сек –1 ( P < 0.05) (рис. 5). Orconectes rusticus из озер потребовалось значительно больше времени, чем F. propinquus из озер и O. rusticus из ручьев, чтобы добраться до источника пищи в 5 см сек –1 обработки ( P <0,05) (рис. 5). Orconectes rusticus и F. propinquus из озер существенно не различались по своим характеристикам в потоке при 30 и 50 см с –1 , как в предыдущем эксперименте ( P > 0.05) (рис. 5). Orconectes rusticus и F. propinquus из озер значительно дольше достигали источника пищи, так как скорость воды увеличивалась с 5 до 30 и с 30 до 50 см с –1 ( P < 0,05) (рис. 5). ). Количество особей из озер, достигающих ограниченного источника пищи на высоте 66 см в секунду –1, было менее 35% как для O. rusticus , так и для F. propinquus , таким образом, среднее время недоступно, но было значительно больше, чем O. .rusticus из ручьев ( P < 0,05) (рис. 5).

Рисунок 5.

Сравнение времени, необходимого для Orconectes rusticus и Faxonius propinquus из озер и O. rusticus из ручьев для достижения источника пищи при 4 скоростях воды с использованием вероятности выживания Каплана-Мейера ( А ). Среднее время (± 95% ДИ), в которое 50% особей достигли ограниченного источника пищи ( B ).При более высоких скоростях воды менее 50% раков достигли источника пищи, поэтому медиана не приводится. Парный тест Log-Rank использовался для проверки значительных различий между группами с использованием скорректированного Бонферрони значения P с использованием пакета survminer (Kassambara & Kosinski, 2017).

Рисунок 5.

Сравнение времени, необходимого для Orconectes rusticus и Faxonius propinquus из озер и O. rusticus из ручьев для достижения источника пищи при 4 скоростях воды с использованием вероятности выживания Каплана-Мейера ( А ).Среднее время (± 95% ДИ), в которое 50% особей достигли ограниченного источника пищи ( B ). При более высоких скоростях воды менее 50% раков достигли источника пищи, поэтому медиана не приводится. Парный тест Log-Rank использовался для проверки значительных различий между группами с использованием скорректированного Бонферрони значения P с использованием пакета survminer (Kassambara & Kosinski, 2017).

ОБСУЖДЕНИЕ

Наши результаты показывают, что Orconectes rusticus в ручьях меньше, чем в озерах, которые мы отобрали в северном Висконсине.Наши результаты также показывают, что как O. rusticus , так и F. propinquus имеют ограниченную способность выдерживать скорость воды свыше 50 см/сек –1 . В частности, у озерных особей была снижена способность переносить скорость движения воды более 30 см/сек –1. В северном Висконсине 90 149 интродуцентов O. rusticus 90 150, вероятно, происходят в озерах с возможностью последующего расселения через ручьи в другие озера. Существование областей с более высоким потоком, особенно в водопропускных трубах или зонах с естественным высоким потоком, может потенциально снизить, но не предотвратить скорость распространения O.rusticus через потоки. Более крупный размер O. rusticus в озерах во многом обусловливает успех O. rusticus , но в ручьях эта разница в размерах отсутствует. Влияние более высокой скорости воды на раков в сочетании с меньшим средним размером O. rusticus может снизить успех O. rusticus в ручьях.

Идея о том, что повышенная скорость воды может изменить рассредоточение в ручьях, особенно хорошо известна для рыб и использовалась для ограничения расселения неместных раков в Европе (Frings et al., 2013). Распространение рыбы значительно снижается в районах с повышенными скоростями воды и в водопропускных трубах, особенно придонных рыб (Wheeler et al. , 2006; Noonan et al. , 2011). Европейские управляющие ресурсами пытались использовать структуры, которые увеличивают скорость воды на гладких поверхностях, чтобы контролировать расселение инвазивных раков в новые места обитания (Kerby et al. , 2005; Frings et al. , 2013). Эффективность этих структур зависела от поддержания скорости воды более 60 см сек –1 и других факторов, например.g., шероховатость поверхностей и наклон оказались менее важными (Frings et al. , 2013). Полевые исследования также показали, что на расселение видов раков сильно влияет повышенная скорость течения и, в частности, паводки (Light, 2003; Bubb et al. , 2004). Примечательно, что эти исследования показали, что наибольшее влияние на расселение оказывают скорости воды свыше 30–50 см·сек –1 (Maude & Williams, 1983; Kerby et al., 2005 г.; Кларк и др. , 2008 г.; Foster & Keller, 2011), что согласуется с приведенными здесь результатами. Однако более высокая турбулентность, связанная с увеличением скорости воды, может повысить эффективность ориентации, помогая им находить источник пищи (Moore & Grills, 1999). Полевые исследования выявили важность скорости воды и субстрата как ключевых факторов, влияющих на раков в ручьях (Light, 2003; Bubb et al. , 2004, 2005; Bobeldyk & Lamberti, 2008).

Размер местных раков не различался в зависимости от среды, но неместные раки были крупнее в озерах, чем в ручьях.Особи O. rusticus были мельче в ручьях (рис. 2), а более крупные особи (длина панциря > 40 мм) встречались редко. Напротив, размеры ручья F. propinquus не уменьшились по сравнению с размерами в озерах, возможно, потому, что их максимальный размер в среднем меньше, чем у O. rusticus , а их чела короче и шире (Tierney et al. , 2000). Широкие, короткие хелаи были обнаружены у раков из мест обитания с высокой скоростью по сравнению с раками из мест обитания с низкой скоростью и могут быть полезны для отклонения воды при увеличении скорости (Perry et al., 2013). Хотя наше исследование не было предназначено для изучения различий внутри ручьев или влияния булыжника, мы наблюдали более крупных особей в районах с низким течением и в районах с более крупным и сложным булыжным субстратом. Было показано, что различия в размерах раков также различаются между районами с разной скоростью движения воды (например, Clark et al. , 2008). Мы не измеряли хелаты отдельных особей, но возможно, что более крупные хелаты O. rusticus могут быть недостатком в ручьях по сравнению с F.propinquus (Roth & Kitchell, 2005). Меньший размер O. rusticus , наблюдаемый в ручьях, может уменьшить конкурентное преимущество O. rusticus по сравнению с другими раками в ручьях, а также может уменьшить воздействие на экосистему по сравнению с наблюдаемым в озерах.

Хотя другие полевые наблюдения и лабораторные испытания показали, что течение более негативно влияет на более крупных особей раков по сравнению с мелкими раками (Light, 2003), в наших экспериментах мы не наблюдали влияния размера.Различий между характеристиками крупных (34–43 мм) и мелких (17–28 мм) O. rusticus при испытанных скоростях воды не наблюдалось, а повышенные скорости воды существенно влияли на оба размерных класса (рис. 4). Это контрастирует с лабораторными исследованиями O. rusticus и F. propinquus , которые показали, что более крупные особи испытывают большее сопротивление (Maude & Williams, 1983). В полевых исследованиях инвазий Pacifastacus leniusculus в ручьях более крупные особи подвергались более негативному влиянию течения, и инвазии, как правило, происходили преимущественно ниже по течению (Light, 2003; Bubb et al., 2004). Взаимодействие субстрата и течения может благоприятствовать мелким ракам, таким как Faxonius obscurus (Hagen, 1870), которые способны занимать рефугиумы, недоступные для более крупных раков, позволяя им занимать участки с большей скоростью течения (Clark et al. , 2008), но неоднородное распределение субстрата все же может ограничивать расселение вверх по течению, потому что раки должны будут испытать на себе весь эффект течения на песчаных отмелях. Таким образом, размер тела панциря сам по себе не может быть хорошим показателем восприимчивости к течению.

Факторы, отличные от размера панциря, могут быть более важными, а сам размер может зависеть от условий течения в среде происхождения. Большие размеры тела, которые существуют в озерах, не были обычным явлением в ручьях, поэтому в наших экспериментах, возможно, использовался слишком маленький диапазон размеров. Пары, в которых собирались эти раки, не имели скорости более 40 см с 90 900 -1 90 901 , но крупные раки могли быть удалены из этих экосистем во время весенних и осенних паводков, когда скорость воды значительно выше.Более примечательна возможность того, что раки могли появиться из среды течения, которая предрасполагала их к борьбе с течением. Отсутствие более крупных особей раков в ручьях предполагает влияние повышенной скорости воды, но из-за их отсутствия мы не смогли экспериментально проверить эффект. Помимо размера тела, есть признаки того, что размер хелэ может быть важным фактором. Мы использовали особей формы II для сравнения видов озерных и речных раков, и у них были более мелкие хелаи, чем у особей формы I.Использование раков формы II может объяснить, почему O. rusticus из ручьев лучше справились с повышенным потоком по сравнению с особями из двух других экспериментов, где использовались раки формы I. К сожалению, невозможно проверить различия между раками формы I и формы II, потому что эти две формы не сосуществуют в природе достаточно долго, чтобы их можно было использовать в экспериментах без риска влияния линьки на поведение. Мы не наблюдали различий в поведении между двумя репродуктивными состояниями, но это следует изучить в будущих экспериментах.Поскольку наши результаты показывают, что размер хеллы может играть роль в способности раков взаимодействовать с повышенной скоростью воды, это может означать, что раки формы II более способны расселяться в средах с более сильным течением.

Подтверждение идеи о том, что раки могут различаться по своей способности справляться с течением в зависимости от среды их происхождения, дополнительно подтверждается различиями в производительности между O. rusticus из ручьев и O. rusticus и F.propinquus из озер (рис. 5). В испытаниях, проверяющих производительность на скорости 5 см в секунду –1 , O. rusticus из озер потребовалось больше времени, чтобы добраться до источника пищи, чем другим ракам, но все особи завершили испытания значительно быстрее, чем при всех других вариантах лечения ( P < 0,05). (рис. 5). Озерным ракам потребовалось значительно больше времени, чем ручью O. rusticus , когда скорость воды была увеличена до 30 и 50 см сек –1 Мы не включили результаты обработки 66 см сек –1 , поскольку менее 10% завершили испытания озерные раки.Самое поразительное различие между озерными и речными раками заключалось в том, что особи речных раков принимали обтекаемую позу тела, в то время как особи озерных раков этого не делали (Maude & Williams, 1983). Эти результаты предполагают, что между этими популяциями могут быть поведенческие различия, и успех может быть снижен, если интродукция происходит с особями из озер в ручьи. Однако были замечены раки из озер, стоящие с телом выше от субстрата и часто двигавшие своими клешнями таким образом, что увеличивалось сопротивление особям непосредственно перед потерей контакта с субстратом.Эти наблюдения указывают на то, что раки могут быть предварительно адаптированы к условиям течения в своей среде обитания и с трудом приспосабливаются к различным средам течения.

Наше исследование позволяет лучше понять роль повышенной скорости воды в динамике инвазии O. rusticus путем экспериментального тестирования влияния повышенной скорости воды на их характеристики. Наши результаты дают ценную информацию для понимания инвазии раков в лотической среде по сравнению с лентической средой.В районах с многочисленными озерами участки коротких ручьев с низкими скоростями воды могут выступать в качестве коридоров для вторжения в районы с многочисленными озерами, в то время как ручьи с водопропускными трубами или районы с сильным течением, где имеется ограниченное количество убежищ, могут ограничивать расселение (Puth & Allen, 2005). Поскольку размер является ключевым фактором успеха в озерах, абиотические эффекты ручьев могут изменить вторжений O. rusticus в озера. Таким образом, распространение крупных 90 149 O. rusticus в озерах, вероятно, будет ограничено высокими скоростями течения в ручьях, а также такими факторами, как давление хищников (DiDonato & Lodge, 1993; Hill & Lodge, 1999), среда обитания доступность (Hill & Lodge, 1995; 1999) и взаимодействие с сородичами (Hill & Lodge, 1994; 1995; 1999).Относительная важность факторов, объясняющих успех инвазий O. rusticus , может сместиться с абиотических факторов (таких как скорость течения или барьеры) в потоках с высоким градиентом на биотические факторы (такие как конкуренция и хищничество) в потоках с низким градиентом или озера. Эта структура может предоставить новые инструменты для ограничения распространения этого и других бентических инвазивных видов в пресноводных экосистемах.

БЛАГОДАРНОСТИ

Мы благодарим Эрика Петерсона и Скотта Сакалука за комментарии и предложения за их помощь в разработке эксперимента.Мы также благодарим Стива Джулиано за его советы по статистическому анализу. Мы также благодарны за предложения и комментарии Кэтрин О’Рейли и двум анонимным рецензентам, чей вклад значительно улучшил рукопись. Альбукадель Кассамбара (отделение биологической гематологии, Монпелье, Франция) получил признание за свою работу по парным тестам функций выживания в пакете survminer R. Джим Данхэм сыграл важную роль в проектировании и создании проточной камеры, без его помощи это было бы невозможно.Частично этот проект финансировался Бета-лямбда-отделением Университета штата Иллинойс Общества биологической чести Фи-Сигма.

ССЫЛКИ

Бобельдык

,

А.М.

и

Ламберти

,

Г.А

.

2008

.

Спустя десятилетие после вторжения: оценка продолжающегося воздействия ржавых раков на реку Мичиган

.

Журнал исследований Великих озер

,

34

:

265

275

.

Богунак

,

А.Дж.

и

Дженкинс

,

Д.Г.

.

2003

.

Экологическое и эволюционное значение расселения пресноводных беспозвоночных

.

Ecology Letters

,

6

:

783

796

.

Бабб

,

Д.Х.

,

Том

,

Т.Дж.

и

Лукас

,

MC

.

2004

.

Перемещение и расселение сигнального рака-вселенца Pacifastacus leniusculus в горных реках

.

Пресноводная биология

,

49

:

357

368

.

Бабб

,

Д.Х.

,

Том

,

Т.Дж.

и

Лукас

,

MC

.

2005

.

Инвазия неаборигенного сигнального рака Pacifastacus leniusculus (Dana) в пределах водосбора в верховых реках

.

Bulletin Français de la Pêche et de la Pisciculture

,

376–377

:

665

673

.

Бабб

,

Д.Х.

,

Том

,

Т.Дж.

и

Лукас

,

MC

.

2006

.

Перемещение, расселение и использование в качестве убежища одновременно встречающихся интродуцированных и местных раков

.

Пресноводная биология

,

51

:

1359

1368

.

Байрон

,

CJ

и

Уилсон

,

К.А.

.

2001

.

Ржавый рак ( Orconectes rusticus ) перемещение внутри и между местами обитания в озере Траут, округ Вилас, Висконсин

.

Журнал Североамериканского бентологического общества

,

20

:

606

614

.

Шарлебуа

,

пополудни

и

Ламберти

,

Г.А

.

1996

.

Вторжение раков в ручей Мичигана: прямое и косвенное воздействие на перифитон и макробеспозвоночных

.

Журнал Североамериканского бентологического общества

,

15

:

551

563

.

Кларк

,

Дж.М.

,

Кершнер

,

М.В.

и

Холомузки

,

J.R

.

2008

.

Влияние размера зерен и сортировки на зависящую от размера реакцию лотических раков на сильное течение

.

Гидробиология

,

610

:

55

66

.

Кларк

,

Дж. М.

,

Кершнер

,

МВт

и

Монтемарано

,

Дж. Дж.

.

2013

.

Специфические для среды обитания эффекты размера частиц, скорости течения, глубины воды и риска нападения хищников на зависящее от размера распределение раков

.

Гидробиология

,

716

:

103

114

.

Кович

,

А.П.

,

Палмер

,

М.А.

и

Кроул

,

Т.А.

.

1999

.

Роль бентических беспозвоночных в пресноводных экосистемах: зообентические виды влияют на потоки энергии и круговорот питательных веществ

.

BioScience

,

49

:

119

127

.

Крэндалл

,

К.А.

и

Де Грав

,

S

.

2017

.

Обновленная классификация пресноводных раков (Decapoda: Astacidea) мира с полным списком видов

.

Журнал биологии ракообразных

,

37

:

615

653

.

Круз

,

М.Дж.

и

Ребело

,

Р

.

2007

.

Колонизация пресноводных местообитаний интродуцированным раком Procambarus clarkii на юго-западе Пиренейского полуострова

.

Гидробиология

,

575

:

191

201

.

Дана

,

Д.Д.

.

1852

.

Ракообразные, Часть I

. В:

Исследовательская экспедиция США в 1838, 1839, 1840, 1841, 1842 годах под командованием Чарльза Уилкса, USN. С

.

Шерман

,

Филадельфия, Пенсильвания

.

ДиДонато

,

Г.Т.

и

Лодж

,

Д.М.

.

1993

.

Смена видов среди раков Orconectes в озерах Висконсина: роль хищников-бори

.

Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences

,

50

:

1484

1488

.

ДиСтефано

,

Р.Дж.

,

Литван

,

МЭ

и

Хорнер

,

PT

.

2009

.

Индустрия наживки как потенциальный вектор интродукции чужеродных раков: признание проблемы рыболовными агентствами и оценка штата Миссури

.

Рыболовство

,

34

:

586

597

.

Фостер

,

HR

и

Келлер

,

TA

.

2011

.

Течение в водопропускных трубах как потенциальный механизм фрагментации потока для местных и неместных видов раков

.

Журнал Североамериканского бентологического общества

,

30

:

1129

1137

.

Фокс

,

Дж.

и

Вайсберг

,

S

.

2011

.

Компаньон R для прикладной регрессии

, Edn. 2.

Sage Publications

,

Thousand Oaks, CA

.

Фрингс

,

Р.М.

,

Vaeßen

,

S.C.K.

,

Groß

,

H.

,

Roger

,

S.

,

Schüttrumpf

,

H.

и

Hollert 3 H

, 90

2013

.

Рыбопроходимый барьер для предотвращения нашествия неместных раков

.

Биологическая консервация

,

159

:

521

529

.

Gamradt

,

SC

и

Kats

,

LB

.

1996

.

Воздействие интродуцированных раков и рыб-комаров на калифорнийских тритонов

.

Биология сохранения

,

10

:

1155

1162

.

Гарви

,

Дж. Э.

,

Реттиг

,

Дж. Э.

,

Штейн

,

Р.А.

,

Лодж

,

Д.М.

и

Клосевски

,

С.П.

.

2003

.

Зависимая от чешуи связь между хищничеством рыбы, прибрежной средой обитания и распространением видов раков

.

Экология

,

84

:

3339

3348

.

Гарви

,

J.E.

,

Штейн

,

Р.А.

и

Томас

,

Х.М.

.

1994

.

Оценка влияния хищничества рыб и межвидовой конкуренции за добычу на сообщество раков

.

Экология

,

75

:

532

547

.

Жирар

,

С

.

1852

.

Пересмотр североамериканских астаков с наблюдениями за их привычками и географическим распространением

.

Труды Академии естественных наук Филадельфии

,

6

:

87

91

.

Гуревич

,

Дж.

и

Падилья

,

Д.К.

.

2004

.

Являются ли инвазивные виды основной причиной вымирания

?

Тенденции в экологии и эволюции

,

19

:

470

474

.

Хаген

,

Х.А

.

1870

.

Монография североамериканских Astacidae

.

Иллюстрированный каталог Музея сравнительной зоологии Гарвардского колледжа

,

3

:

1

109

, пожалуйста. 1–11.

Холм

,

A.M.

и

Лодж

,

Д.М

.

1994

.

Diel Изменения в спросе на ресурсы – Конкуренция и хищничество в смене видов среди раков

.

Экология

,

75

:

2118

2126

.

Холм

,

A.M.

и

Лодж

,

Д.М.

.

1995

.

Влияние сублетальных взаимодействий окуня и всеядного рака на мультитрофическом уровне

.

Журнал Североамериканского бентологического общества

,

14

:

306

314

.

Холм

,

A.M.

и

Лодж

,

Д.М.

.

1999

.

Замена резидентных раков экзотическими раками: роль конкуренции и хищничества

.

Экологические приложения

,

9

:

678

690

.

Холм

,

A.M.

,

Синарс

,

Д.М.

и

Лодж

,

Д.М.

.

1993

.

Вторжение раков Orconectes rusticus в занятую нишу : потенциальное значение роста и смертности

.

Экология

,

94

:

303

306

.

Хоффман

,

А.Л.

,

Олден

,

Д.Д.

,

Монро

,

Дж. Б.

,

Пофф

2, Н.

,

Вельниц

,

Т.

и

Винс

,

Дж.А

.

2006

.

Скорость течения и пятнистость среды обитания формируют ручейное движение травоядных

.

Ойкос

,

115

:

358

368

.

Грабик

,

Т.Р.

и

Магнусон

,

Дж

.

1999

.

Моделирование распространения экзотической радужной корюшки ( Osmerus mordax ) в озерном крае северного Висконсина и последствия для управления

.

Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences

,

56

:

35

42

.

Jansen

,

W.

,

Geard

,

N.

,

Mosindy

,

T.

,

Олсон

,

Г.

и

Тернер

,

М

.

2009

.

Относительная численность и местообитание трех раков ( Orconectes virilis , O. rusticus и O. immunis ) вблизи фронта инвазии O. rusticus , а также долгосрочные изменения в их распределении в оз. Вудс, Канада

.

Водные вторжения

,

4

:

627

649

.

Джонсон

,

Л.Е.

и

Карлтон

,

JT

.

1996

.

Распространение после укоренения при крупномасштабных инвазиях: механизмы расселения дрейссены Dreissena polymorpha

.

Экология

,

77

:

1686

1690

.

Кассамбара

,

А.

и

Косински

,

М

.

2017

.

Рисование кривых выживания с помощью «ggplot2»

[R package survminer version 0.3.1].

Керби

,

Дж. Л.

,

Райли

,

СПД

,

Кац

,

Л.Б.

и

Уилсон

,

P

.

2005

.

Барьеры и течение как ограничивающие факторы распространения инвазивного рака ( Procambarus clarkii ) в ручьях южной Калифорнии

.

Биологическая консервация

,

126

:

402

409

.

Кершнер

,

М.W.

и

Lodge

,

DM

.

1995

.

Влияние прибрежной среды обитания и хищничества рыб на распространение экзотических раков, Orconectes rusticus

.

Журнал Североамериканского бентологического общества

,

14

:

414

422

.

Коцовский

,

п.м.

,

Таллман

,

Дж.А.

,

Джуд

,

Д.Дж.

,

Мерфи

,

Д.М.

,

Коричневый

,

JE

и

Степьен

,

CA

.

2011

.

Распространение трубконосых бычков Proterorhinus semilunaris в западную часть озера Эри и потенциальное воздействие на местные виды

.

Биологические вторжения

,

13

:

2775

2784

.

Кутка

,

FJ

,

Ричардс

,

К.

и

Меррик

,

GW

.

1996

.

Среда обитания и распространение раков, Orconectes propinquus , в бассейне реки Сент-Луис, Миннесота, США

.

Раки пресноводные

,

11

:

73

82

.

Длина

,

Р.В

.

2016

.

Метод наименьших квадратов означает: пакет R ls означает

.

Журнал статистического программного обеспечения

,

69

:

1

33

.

Леприер

,

Ф.

,

Хикки

,

М.А.

,

Арбакл

,

К.Дж.

,

Броссе

,

С.

и

Таунсенд

,

C.R

.

2006

.

Гидрологические нарушения приносят пользу местной рыбе за счет экзотической рыбы

.

Журнал прикладной экологии

,

43

:

930

939

.

Легкий

,

Т

.

2003

.

Успех и неудача при инвазии лотических раков: роль гидрологической изменчивости и изменения среды обитания

.

Пресноводная биология

,

48

:

1886

1897

.

Лодж

,

Д.М.

,

Штейн

,

Р.А.

,

Коричневый

,

К.М.

,

Кович

,

А.П.

,

Брёнмарк

,

К.

,

Гарви

,

Дж.Е.

и

Клосевски

Р

.

1998

.

Прогнозирование воздействия экзотических пресноводных видов на местное биоразнообразие: проблемы пространственного масштабирования

.

Австралийский экологический журнал

,

23

:

53

67

.

Лодж

,

Д.М.

,

Тейлор

,

К.А.

,

Холдич

,

Д.М.

и

Скурдал

,

J

.

2000

.

Уменьшение воздействия интродукции экзотических раков: необходима новая политика

.

Рыболовство

,

25

:

21

23

.

Маркетти

,

М.П.

и

Мойл

,

П.Б.

.

2010

.

Влияние режима течения на рыбные сообщества в регулируемом калифорнийском водотоке

.

Экологические приложения

,

11

:

530

539

.

Маркетти

,

М.П.

,

Лайт

,

Т.

,

Мойл

,

П.B.

и

Viers

,

JH

.

2004

.

Вторжение рыб в водоразделы Калифорнии: проверка гипотез с использованием ландшафтных моделей

.

Экологические приложения

,

14

:

1507

1525

.

Мод

,

С.Х.

и

Williams

,

DD

.

1983

.

Поведение раков в водотоках: гидродинамика восьми видов с учетом особенностей их распространения в южной части Онтарио

.

Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences

,

40

:

68

77

.

Мур

,

П.А.

и

Грили

,

JL

.

1999

.

Химическая пищевая ориентация раков Orconectes rusticus : влияние гидродинамики

.

Поведение животных

,

58

:

953

963

.

Мойл

,

П.Б.

и

Свет

,

Т

.

1996а

.

Биологические инвазии пресной воды: эмпирические закономерности и теория сборки

.

Биологическая консервация

,

78

:

149

161

.

Мойл

,

П.Б.

и

Свет

,

Т

.

1996b

.

Нашествие рыб в Калифорнии: определяют ли абиотические факторы успех

?

Экология

,

77

:

1666

1670

.

Мругала

,

А.

,

Kozubíková-Balcarová

,

E.

,

Chucholl

,

C.

,

Cabanillas Resino

,

S.

,

Viljamaa-Dirks

,

S.

,

VUKIć

,

J.

и

Петрусек

,

А

.

2014

.

Торговля декоративными раками в Европе как возможный путь проникновения важных болезней ракообразных: чумы ракообразных и синдрома белых пятен

.

Биологические вторжения

,

17

:

1313

1326

.

Нунан

,

М.Дж.

,

Грант

,

Дж.В.А.

и

Джексон

,

CD

.

2011

.

Количественная оценка эффективности прохода рыбы

.

Рыба и рыболовство

,

13

:

450

464

.

NYSTROM

,

P.

,

SVENSSON

,

O.

,

Lardner

,

B.

,

BRÖNMARK

,

C.

&

Granéli

,

W

.

2001

.

Влияние многочисленных интродуцированных хищников на сообщество прибрежных прудов

.

Экология

,

82

:

1023

1039

.

Олсен

,

Т.М.

,

Лодж

,

Д.М.

,

Капелли

,

Г.М.

и

Хулихан

,

Р.Дж.

.

1991

.

Механизмы воздействия интродуцированных раков ( Orconectes rusticus ) на прибрежных сородичей, улиток и макрофитов

.

Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences

,

48

:

1853

1861

.

Ортманн

,

А.Е.

.

1905

.

Взаимное родство видов рода Cambarus и их расселение по территории США

.

Труды Американского философского общества

,

44

:

91

136

, пл. 3.

Пекор

,

К.В.

,

Дин

,

К.C.

и

Каллендер

,

TC

.

2008

.

Лабораторное кондиционирование стоячей или проточной водой не влияет на реакцию красного болотного рака ( Procambarus clarkii ) на пищевой стимул в местах обитания проточной воды

.

Морское и пресноводное поведение и физиология

,

41

:

43

51

.

Перри

,

В.Л.

,

домкраты

,

утра

,

Фиоренца

,

Д.

,

Янг

,

М.

,

Кунке

,

Р.

и

Жакмен

,

С.Дж.

.

2013

.

Влияние скорости воды на размер и форму ржавых раков, Orconectes rusticus

.

Пресноводные науки

,

32

:

1398

1409

.

Poff

,

N.L.

и

Уорд

,

СП

.

1989

.

Последствия изменчивости и предсказуемости речного стока для структуры лотического сообщества: региональный анализ моделей речного стока

.

Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences

,

46

:

1805

1818

.

Пропст

,

Д.Л.

,

Гидо

,

К.Б.

и

Стефферуд

,

J.A

.

2008

.

Режимы естественного стока, неместные рыбы и устойчивость местных рыб в речных системах засушливых земель

.

Экологические приложения

,

18

:

1236

1252

.

Пут

,

Л.М.

и

Allen

,

T.F.H

.

2005

.

Потенциальные коридоры для ржавых раков, Orconectes rusticus , в озерах северного Висконсина (США): уроки экзотических вторжений

.

Ландшафтная экология

,

20

:

567

577

.

R Основная группа

.

2017

.

R: язык и среда для статистических вычислений

.

Вена, Австрия

.

Рот

,

Б.М.

и

Китчелл

,

JF

.

2005

.

Роль селективного по размеру хищничества в перемещении раков Orconectes после инвазии ржавых раков

.

Ракообразные

,

78

:

297

310

.

Шрайбер

,

Э.С.Г.

,

Куинн

,

Г.П.

и

Озеро

,

PS

.

2003

.

Распространение чужеродной водной улитки в зависимости от изменчивости стока, деятельности человека и качества воды

.

Пресноводная биология

,

48

:

951

961

.

Сепульведа

,

А.Дж.

и

Марчак

,

Л.Б.

.

2012

.

Активное расселение водных вселенцев, определяемое ресурсными и стоковыми условиями

.

Биологические вторжения

,

14

:

1201

1209

.

Страйер

,

Д.Л

.

2010

.

Чужеродные виды в пресных водах: экологические последствия, взаимодействие с другими факторами стресса и перспективы на будущее

.

Пресноводная биология

,

55

:

152

174

.

Тирни

,

А.Дж.

,

Годлески

,

М.С.

и

Массанари

,

J.R

.

2000

.

Сравнительный анализ агонистического поведения четырех видов раков

.

Журнал биологии ракообразных

,

20

:

54

66

.

Wheeler

,

AP

,

Angermeier

,

P.Л.

и

Розенбергер

,

AE

.

2006

.

Воздействие новых автомагистралей и последующей урбанизации ландшафта на среду обитания и биоту рек

.

Reviews in Fisheries Science

,

13

:

141

164

.

Уилсон

,

К.А.

,

Магнусон

,

Дж.Дж.

,

Лодж

,

Д.М.

,

Холм

,

А.М.

,

Крац

,

Т.К.

,

Перри

,

В.Л.

и

Уиллис

,

ТВ

.

2004

.

Инвазия многолетнего ржавого рака ( Orconectes rusticus ): характер расселения и изменение сообщества в северном озере умеренного пояса

.

Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences

,

61

:

2255

2266

.

© Автор(ы), 2017 г. Опубликовано Oxford University Press от имени Общества ракообразных.Все права защищены. Для разрешений, пожалуйста, по электронной почте: [email protected]

Вода | Бесплатный полнотекстовый | Раки как биоиндикаторы для мониторинга ClO2: тематическое исследование установки очистки воды пивоваренного завода

1. Введение

Известно, что десятиногие раки, такие как раки, чувствительны к загрязнению в пресноводных водоемах. Учитывая их чувствительность к изменениям качества воды, эти организмы очень чутко реагируют на изменения в водных экосистемах [1,2,3]. Раки использовались в качестве биоиндикаторов как в водной среде, так и в лабораторных условиях.Они демонстрируют склонность к накоплению поллютантов в своих тканях [1,4,5] и вызывают реакцию на различные вещества [2,3,6]. В последующем существует перспектива их использования в качестве биоиндикаторов в практическом мониторинге в производственных условиях. Учитывая, что раки ведут ночной образ жизни, их частота сердечных сокращений и двигательная активность увеличиваются в ночное время [7,8,9]. Однако на частоту сердечных сокращений раков также могут влиять определенные раздражители [7,8,9]. В нескольких исследованиях описана реакция сердца раков на химические раздражители, включая органические соединения хлора [3,10] и содержание хлоридов в воде [11].Хотя для очистки воды могут использоваться различные соединения, наиболее эффективным дезинфицирующим средством является диоксид хлора [12]. Он является сильным окислителем среди соединений хлора и широко применяется для обеззараживания поверхностных вод [13]. Существует несколько химических реакций, в результате которых образуется диоксид хлора (ClO 2 ), и одна из них — реакция соляная кислота — хлорит натрия [13]:

5NaClO 2 + 4HCl = 4ClO 2 + 5NaCl + 2H 2 О.

(1)

Как правило, концентрации при обработке ClO 2 могут варьироваться от 0.07 до 2 мг л 90 900 -1 90 901 , что достаточно для обеззараживания воды [14]. Диоксид хлора можно эффективно применять для окисления железа и марганца при температурах до 2 °С и рН 5,5 [15]. Более того, ClO 2 эффективно удаляет как вкусы, так и запахи [12], и его порог в этом случае может составлять всего 0,2 мг л 90 900 -1 90 901 [14]. При очистке воды ClO 2 восстанавливается до основного продукта разложения – хлорита (ClO 2 ) [13,16].Следовательно, уровни ClO 2 напрямую зависят от используемой концентрации ClO 2 . Следовательно, важно поддерживать уровни ClO 2 во время очистки воды, чтобы предотвратить превышение уровня хлорита рекомендованного ВОЗ значения [14]. Учитывая, что ClO 2 является широко используемым дезинфицирующим средством, важно понимать его действие. на живые организмы. В настоящее время эффекты ClO 2 на водные организмы остаются плохо описанными и в основном сосредоточены на костистых рыбах [17,18,19].Кроме того, в одном исследовании описывается токсичность ClO 2 для дрейссены Dreissena polymorpha [20].

В настоящем исследовании изучалась эффективность раков в качестве биоиндикаторов для мониторинга уровней ClO 2 в процессе очистки воды на местном пивоваренном заводе с упором на биологическую реакцию и смертельную концентрацию взрослых сигнальных раков Pacifastacus leniusculus на длительное воздействие ClO 2 контакт.

2. Материалы и методы

2.1. Процесс мониторинга
Мониторинг проводился с февраля по август 2017 года в условиях эксплуатации частного предприятия «Пивоварня Противин», Противин, Чешская Республика.Это практическое исследование раков проводилось с апреля 2016 года, а отслеживание данных началось с февраля 2017 года. На пивоваренном заводе есть установка для очистки воды, где для очистки воды используется ClO 2 . ClO 2 был получен реакцией соляная кислота-хлорит натрия. В этой реакции выходы ClO 2 и конверсия имели разные значения, где максимальный выход 100 %, а максимальная конверсия 80 %, что достаточно для водоподготовки [13]. Вода ClO 2 концентрации измерялись ежедневно.Все раки подвергались воздействию ClO 2 во время мониторинга. В связи с условиями работы предприятия использование незагрязненной контрольной группы было невозможно. Однако предыдущие исследования четко описали типичную динамику сердечного ритма раков [8,21].
2.2. Система мониторинга
В этом исследовании использовалась система неинвазивного мониторинга сердечной деятельности раков (NICCAM), описанная Пауциной и соавт. [22]. Эта система NICCAM состоит из многоканального 14-битного аналого-цифрового преобразователя (АЦП) с интерфейсом USB, персонального компьютера с программным обеспечением для обработки данных и инфракрасных (ИК) оптических датчиков.

Эта система может отслеживать, записывать и анализировать сердечную деятельность раков, выраженную в виде частоты сердечных сокращений, и сохранять текстовые файлы в цифровом виде. Графический пользовательский интерфейс программного обеспечения одновременно отображал необработанные сигналы сердечной деятельности пяти раков.

Датчики фиксировались нетоксичным двухкомпонентным эпоксидным клеем на спинной стороне панциря каждого рака над сердцем в месте регистрации наибольшей частоты сердечных сокращений. Клей затвердел примерно через 15 минут. Прикрепленный датчик по-прежнему позволял рачкам свободно перемещаться по аквариуму.Отслеживаемые сигналы сердечной деятельности раков записывались и отображались в графическом пользовательском интерфейсе программного обеспечения в режиме реального времени. Данные о сердечной деятельности непрерывно записывались на персональный компьютер, а затем обрабатывались с помощью MS Excel для дальнейшего анализа на основе созданных диаграмм. Учитывая, что за период наблюдения один рак успешно линял, был проанализирован и его предэкдизисный период.

2.3. Экспериментальные животные

Взрослые сигнальные раки P. leniusculus были получены из прудов вблизи Велке Мезиржичи (49.3788544 N, 16.0825961 E) в районе Высочина, Чехия. Были использованы неместные виды раков с учетом охраняемого статуса местных видов и правил, запрещающих манипулирование ими. Настоящее исследование проводилось в практических условиях эксплуатации пивоваренного завода, которые снижали риски, связанные с побегом и интродукцией видов, и позволяли использовать неместных раков.

Перед началом эксперимента раков в течение двух недель акклиматизировали в лабораторных условиях Факультета рыболовства и охраны вод Южночешского университета в Ческе-Будейовицах, Водняны, Чешская Республика.Раки содержались индивидуально в рециркуляционных аквариумных системах. Кормление и подмену воды проводили два раза в неделю. Летальности в период акклиматизации не наблюдалось.

Перед началом мониторинга раков (с прикрепленными датчиками) акклиматизировали к более низким температурам в инкубаторах (термостатические шкафы Liebherr FK 5440, Liebherr-Hausgeräte Ochsenhausen GmbH, Оксенхаузен, Германия), где температуру снижали на 1 °C каждый следующий день. При достижении акклиматизированной температуры 10°С раки были перевезены в термобоксах в небольшом количестве воды от лаборатории до пивзавода на автомобиле (примерно 10 км).Перед экспериментом раков визуально осматривали на отсутствие болезней и собирали их биометрические данные: длина панциря (среднее значение ± стандартное отклонение): 43,8 ± 0,77 мм; общая длина: 90,13 ± 1,6 мм; и общий вес: 33,68 ± 2,03 г. Вес и длину измеряли с помощью цифровых штангенциркулей (Schut Geometrical Metrology, Гронинген, Нидерланды) и электронных весов (Kern & Sohn GmbH, Балинген, Германия). Оба пола раков использовали на основании предыдущего исследования [23], не обнаружившего существенных различий между их реакцией на раздражители.В эксперименте использовали только раков с интактными придатками (усиками, хелами и ходильными ногами). В ходе эксперимента раков содержали в отдельных проточных аквариумах объемом 10 л, каждый из которых получал воду, обработанную ClO 2 , с температурой 10 ± 0,5 °C и pH 8,3 ± 0,5, при постоянном фотопериоде 12:12 световой цикл. Каждый аквариум был снабжен искусственным укрытием (половина керамического цветочного горшка). Отверстие, сделанное на верхней поверхности укрытия, позволяло регистрировать сердечную деятельность, даже когда раки (с прикрепленными датчиками) находились внутри укрытия.Экспериментальная система могла одновременно содержать десять раков. Пять раков получили пульсометр каждый, а остальные пять раков были оставлены в качестве резерва. В случае линьки или падежа особь заменяла одна из резервных. Таким образом, всего за период наблюдения было использовано 25 животных. Животных ежедневно кормили коммерческими пищевыми гранулами (Sera GmbH; Хайнсберг, Германия), а остатки и фекалии удаляли путем ежедневного сифонирования.
2.4. Статистический анализ
Данные, полученные от леченных раков, были разделены на три группы в соответствии с днем ​​воздействия максимальной концентрации ClO 2 (C max ; ClO 2 > 0.2 мг L -1 ): первая группа получила C max на 4 ± 2 день; вторая группа на 13 ± 1 день; и третья группа подвергалась воздействию C max на 38 ± 6 день после заселения в экспериментальную аквариумную систему (таблица 1). Данные были сгруппированы для последующего анализа.

Критерий Шапиро-Уилка использовался для оценки нормальности остатков. Данные были преобразованы, когда это было необходимо, чтобы соответствовать предположениям о нормальности и равной дисперсии. Различия в продолжительности жизни после воздействия ClO 2 C max между тестируемыми группами оценивались с помощью однофакторного дисперсионного анализа (ANOVA) и последующего апостериорного теста Тьюки (Statistica 13, StatSoft, Inc., Талса, Оклахома, США). Данные представлены как среднее ± стандартное отклонение (SD). Уровень значимости был установлен на уровне p < 0,05.

4. Обсуждение

В настоящем исследовании влияние длительного воздействия на сигнальных раков различных уровней ClO 2 изучалось и оценивалось посредством наблюдения за частотой сердечных сокращений, суточным ритмом и смертностью.

Однократной зарегистрированной линьке предшествовали быстрые колебания сердечного ритма. Увеличение частоты сердечных сокращений наблюдалось за четыре часа до линьки до 60 уд/мин с пиком 72 уд/мин, а снижение частоты сердечных сокращений было обнаружено за 35 мин до линьки (рис. 1).Kuramoto [24] описал сердечные изменения необработанного лангуста Panulirus japonicus перед линькой и отметил, что частота сердечных сокращений во время линьки лангуста росла и падала так же, как и у раков. Частота сердечных сокращений у здорового омара увеличивалась за 1–2 ч до шелушения до пика 80–120 уд/мин и снижалась примерно за 15 мин до начала линьки. Таким образом, изменения частоты сердечных сокращений нестимулированного лангуста и сигнального рака, подвергнутого воздействию ClO 2 , в предлинятельный период были схожими.Неудачная линька также приводила к гибели. Куклина и соавт. [3], хлорамином-Т подвергались воздействию узкопалые раки Astacus leptodactylus, страдавшие упадком сил при воздействии физических нагрузок. Дефицит энергии может быть потенциальной причиной неудачной линьки в нашем исследовании, где воздействие ClO 2 истощило энергетические запасы раков и запретило линьку, что привело к их гибели. выше ночью, чем днем, даже при температуре ниже 14 °C [8].Настоящее исследование показало влияние ClO 2 на частоту сердечных сокращений и ночное поведение раков. У всех лиц наблюдалось нарушение суточного сердечного ритма, выражающееся в случайном снижении и повышении частоты сердечных сокращений независимо от времени суток. Типичное ночное учащение пульса не было отмечено при самой низкой концентрации ClO 2 у 32% раков, а при высоких концентрациях оно полностью нарушалось у всех животных. Как только суточный ритм нарушался, суточная ритмичность терялась, что свидетельствовало о нарушении функции сердца и приводило к гибели раков (рис. 3).Аналогичное наблюдение было описано Кузнецовой и соавт. [21], где высококонцентрированный раствор гидрохинона (1 г л 90 900 -1 90 901 ) нарушал циркадный ритм A. leptodactylus перед смертью. Стиришав и др. [7] заметили, что частота сердечных сокращений у благородных раков Astacus astacus увеличивалась днем ​​и уменьшалась ночью при воздействии меди (8,0 мг л 90 900 -1 90 901 ) и ртути (0,1 мг л 90 900 -1 90 901 ). При этом высокая смертность (>90%) была выявлена ​​через 19 дней экспозиции. Следовательно, ClO 2 , использованный в нашем мониторинге, и тяжелые металлы, использованные Styrishave et al.[7] и гидрохинон, использованный Кузнецовой и соавт. [21] могут быть токсичными соединениями в определенных концентрациях и могут негативно влиять на здоровье водных организмов и даже вызывать их смертность. Предполагается, что не только потеря циркадного ритма вызывает смертность раков, но и изменения в физиологии. На жабры толстоголового гольяна Pimephales promelas отрицательно влияли концентрации ClO 2 0,13 мг л 90 900 -1 90 901 [25]. Чупани и др. [26] обнаружили тяжелые гистопатологические изменения у раков, подвергшихся воздействию надуксусной кислоты (2–10 мг л 90 900 -1 90 901 ), в то время как аналогичные эффекты часто вызывают гибель молоди белого амура Ctenopharyngodon idella [27] и канального сома Ictalurus punctatus [28].Впоследствии ClO 2 мог вызывать неблагоприятные кардиореспираторные реакции, снижать рост личинок радужной форели (Oncorhynchus mykiss) в концентрациях выше 0,3 мг л -1 [17] и вызывать окислительные повреждения и изменения антиоксидантной защиты в ткани сердца. молодь радужной форели [19]. Следовательно, это может иметь аналогичный эффект у раков. Более того, ClO 2 более токсичен для водных организмов, чем хлорит и надуксусная кислота [17,18]. Поэтому, учитывая, насколько ClO 2 вреден для нецелевых водных животных и что он более токсичен, чем другие вещества, ClO 2 , вероятно, может оказывать неблагоприятное воздействие на ткани раков, приводя к различным нарушениям и последующей смертности.Пиковые концентрации ClO 2 (0,2–0,29 мг л -1 ), наблюдаемые в ходе нашего эксперимента, существенно влияли на продолжительность жизни животных. В другом исследовании установлено, что 1–5 мг л -1 ClO 2 вызывают гибель дрейссены D. polymorpha [20].

При возникновении C max смертность раков была отмечена примерно через 10 ± 7 дней. Первая группа, скорее всего, не выжила из-за немедленного воздействия повышенных концентраций ClO 2 , что привело к быстрой смертности.Длительное воздействие низких и средних концентраций ClO 2 на третью группу приводило к кумулятивному эффекту, препятствующему регенерации органов и тканей, и приводило к гибели раков через 5 ± 2 дня после появления C max . Вторая группа, которая подвергалась воздействию умеренных концентраций ClO 2 в течение относительно короткого времени (больше, чем первая группа, но меньше, чем третья группа), имела наибольшую продолжительность жизни после получения C max . Это может свидетельствовать о том, что реакции раков различаются у разных людей.

Cherax quadricarinatus (краснопалый рак)

Abdu U, Davis C, Khalaila I, Sagi A, 2002. кДНК вителлогенина Cherax quadricarinatus кодирует липопротеин со способностью связывать кальций, и его экспрессия индуцируется после удаления андрогенной железы в сексуально-пластической системе. General and Comparative Endocrinology, 127(3):263-272

Abdu U, Yehezkel G, Sagi A, 2000. Развитие ооцитов и динамика полипептидов во время созревания яичников красноклешневого рака Cherax quadricarinatus.Invertebrate Reproduction and Development, 37(1):75-83

Abdu U, Yehezkel G, Weil S, Ziv T, Sagi A, 2001. Является ли уникальный отрицательно заряженный полипептид HDL ракового желтка компонентом вителлина ракообразных? Journal of Experimental Zoology, 290:218-226

Ackefors HEG, 2000. Технология выращивания пресноводных раков в 1990-х годах: европейская и глобальная перспективы. Fish and Fisheries, 1(4):337-359

Ahyong ST, Yeo DCJ, 2007. Дикие популяции австралийских красноклешневых раков (Cherax quadricarinatus von Martens) в водосборных бассейнах Сингапура.Biological Invasions, 9:943-946

An ChuanGuang, Weng XianLong, Xu YongZhen, Fan YuJie, Zhao YunLong, 2011. Гистологические и ультраструктурные исследования мужской репродуктивной системы и сперматогенеза у раков с красными клешнями, Cherax quadricarinatus. Журнал биологии ракообразных, 31 (2), 223-230. http://www.bioone.org/doi/full/10.1651/10-3342.1 doi: 10.1651/10-3342.1

Anonymous, 1997. Аквакультура неэндемичных видов в Западной Австралии, краснопалые раки. Аквакультура неэндемичных видов в Западной Австралии, краснопалые раки.[Документ по управлению рыболовством № 100.]

Anson KJ, Rouse DB, 1994. Влияние солености на вылупление и выживание после вылупления австралийских красноклешневых раков Cherax quadricarinatus. Journal of the World Aquaculture Society, 25(2):277-280

Baker N, Bruyn Mde, Mather PB, 2008. Закономерности молекулярного разнообразия в диких популяциях красного клешневого рака (Cherax quadricarinatus) из северной Австралии и Папуа-Новой Гвинеи. : влияние ландшафтной эволюции плио-плейстоцена. Пресноводная биология, 53(8):1592-1605

Барки А., Леви Т., Хулата Г., Карплюс И., 1997.Годовой цикл нереста и линьки краснопалого рака Cherax quadricarinatus в лабораторных условиях. Aquaculture, 157(3/4):239-249

Belle CC, Yeo DCJ, 2010. Новые наблюдения экзотического австралийского красноклешневого рака Cherax quadricarinatus (von Martens, 1868) (Crustacea: Decapoda: Parastactidae) в Сингапуре. . Nature in Singapore, 3:99-102

Bortolini JL, Alvarez F, Rodríguez-Almaraz G, 2007. О присутствии австралийского красноклешневого рака Cherax quadricarinatus в Мексике.Биологические вторжения, 9(5):615-620. http://www.springerlink.com/content/j71700153298725g/fulltext.html

CABI, 2004. Техническое описание Cherax quadricarinatus. Справочник по аквакультуре. Уоллингфорд, Великобритания: CABI. http://www.cabi.org/ac

Cannon LRG, 1991. Темноголовые симбионты пресноводных раков Cherax quadricarinatus из северной Австралии. Hydrobiologia, 227:341-347

Chang AKW, 2001. Анализ эффективности рецептурного корма в сравнении с коммерческим кормом из креветок для раков Cherax quadricarinatus.World Aquaculture, 32:19-23

Cortes-Jacinto E, Villarreal-Colmenares H, Civera-Cerecedo R, Naranjo-Paramo J, 2004. Влияние уровня пищевого белка на рост и выживание предвзрослых пресноводных раков Cherax quadricarinatus (фон Мартенс) в однополой культуре. Aquaculture Research, 35:71-79

Curtis MC, Jones CM, 1995. Наблюдения за однополым культивированием красноклешневых раков Cherax quadricarinatus von Martens (Decapoda: Parastacidae) в земляных прудах. Журнал Всемирного общества аквакультуры, 26:154-159

Кертис М.С., Джонс С.М., 1995.Обзор методов выращивания красноклешневых раков Cherax quadricarinatus в северной Австралии. Пресноводные раки, 10:447-455

D’Agaro E, Luise GDe, Lanari D, 1999. Текущее состояние разведения раков в Италии. Freshwater Crayfish, 12:506-517

Doupé RG, Morgan DL, Gill HS, Rowland AJ, 2004. Интродукция красного клешневого рака Cherax quadricarinatus (von Martens) в озеро Кунунурра, река Орд, Западная Австралия: перспективы «ябби» в Кимберли. Журнал Королевского общества Западной Австралии, 87:187-191

Эдгертон Б., Оуэнс Л., 1997.Возраст при первом заражении Cherax quadricarinatus бациллоподобным вирусом Cherax quadricarinatus и вирусом, подобным Cherax Giardiavirus, и производство предполагаемых безвирусных раков. Aquaculture, 152(1/4):1-12

Эдгертон Б., Оуэнс Л., Харрис Л., Томас А., Вингфилд М., 1995. Обследование состояния здоровья выращенных на ферме красноклешневых раков Cherax quadricarinatus (Von Martens) в тропической Австралии. Freshwater Crayfish, 10:322-338

Edgerton BF, 1999. Болезни краснопалых пресноводных раков. Журнал «Аквакультура», 25:26-38

ФАО-ДИАС, 2011 г.База данных по интродукциям водных видов. Глобальная информационная система ФАО по рыболовству. http://www.fao.org/fishery/introsp/search/en

MSRB Figueiredo, Kricker JA, Anderson AJ, 2001. Активность пищеварительных ферментов в пищеварительном тракте красного клешневого рака, Cherax quadricarinatus (Decapoda: Parastacidae). Journal of Crustacean Biology, 21:334-344

Garcia Vazquez S, 2009. Распространение экзотических австралийских раков Cherax quadricarinatus (von Martens, 1868) в Пуэрто-Рико. Маягуэс, Пуэрто-Рико: Университет Пуэрто-Рико, 70 стр.

Гарсия-Герреро М., Хендриккс М.Э., Вильярреал У., 2003.Описание эмбрионального развития Cherax quadricarinatus (Von Martens, 1868) (Decapoda, Parastacidae) на основе метода стадирования. Crustaceana, 76:269-280

Groff JM, McDowell T, Friedman CS, Hedrick RP, 1993. Обнаружение неокклюзированного бакуловируса у пресноводных раков Cherax quadricarinatus в Северной Америке. Journal of Aquatic Animal Health, 5(4):275-279

Gu H, Mather PB, Capra MF, 1994. Относительный рост хелипед и брюшка, а также производство мышц у самцов и самок красного клешневого рака, Cherax quadricarinatus von Martens.Aquaculture, 123:249-257

Herbert B, 1987. Заметки о болезнях и эпибионтах Cherax quadricarinatus и C. tenuimanus (Decapoda: Parastacidae). Aquaculture, 64(3):165-173

Hinton AW, Jones CM, 1997. Выращивание красноклопых раков, экономическая перспектива В: Аквакультура красноклешневых раков. Мариба, Австралия: Департамент первичной промышленности, 2-10

Холдич Д.М., Рейнольдс Д.Д., Роджерс В.Д., 1999. Местные и чужеродные раки на Британских островах. В: Раки в Европе как чужеродные виды.Как извлечь пользу из плохой ситуации? [ред. Герарди, Ф. \ Холдич, Д. М.]. Роттердам, Нидерланды: А.А. Balkema, 221-234

Holthuis LB, 1986. Пресноводные раки Новой Гвинеи. Пресноводные раки, 6:48-58

МСОП, 2010 г. Красный список исчезающих видов МСОП (версия 2010.3). Красный список исчезающих видов МСОП (версия 2010.3). http://www.iucnredlist.org

Johnston B, Jones CM, 2001. Redclaw Profit, Версия 1.1. Брисбен, Австралия: Департамент первичной промышленности

Jones CM, 1990.Биологический и аквакультурный потенциал тропических пресноводных раков Cherax quadricarinatus. Брисбен, Австралия: Департамент первичной промышленности, QI

Jones CM, Grady J, 2000. Redclaw от урожая до рынка: руководство по процедурам обработки. Брисбен, Австралия: Департамент первичной промышленности, QI99083

Jones CM, McPhee CP, Ruscoe IM, 1998. Разведение красных когтей: управление и выбор маточного стада. Брисбен, Департамент первичной промышленности, QI98016

Jones CM, McPhee CP, Ruscoe IM, 2000.Обзор генетического улучшения скорости роста красноклешневых раков Cherax quadricarinatus (von Martens) (Decapoda: Parastacidae). Aquaculture Research, 31(1):61-67

Jones CM, Ruscoe I, 1996. Технология производства красного клешневого рака (Cherax quadricarinatus). Заключительный отчет FRDC Project 92/119, Корпорация по исследованиям и развитию рыболовства, Канберра

Карплюс И., Барки А., Коэн С., Хулата Г., 1995. Разведение австралийских красноклешневых раков Cherax quadricarinatus в Израиле: I.Поликультура с рыбой в земляных прудах. Israel Journal of Aquaculture, 47:6-16

Karplus I, Sagi A, Khalaila I, Barki A, 2003. Мягкое красное пятно австралийского пресноводного рака (Cherax quadricarinatus (von Martens)): обзор и перспективы на будущее исследование. Journal of Zoology, 259(4):375-379

Karplus I, Zoran M, Milstein A, Harpaz S, Eran Y, Joseph D, Sagi A, 1998. Культура австралийских красноклешневых раков (Cherax quadricarinatus) в Израиль. III. Выживание в земляных прудах при зимних температурах окружающей среды.Aquaculture, 166(3/4):259-267

Karplus I, Zoran M, Milstein A, Harpaz S, Eran Y, Joseph D, Sagi A, 1998. Разведение австралийских красноклешневых раков (Cherax) в Израиле. Рыболовство и рыбоводство в Израиле. Haifa, 31:172-182

Khalaila I, Katz T, Abdu U, Yehezkel G, Sagi A, 2001. Влияние имплантации гипертрофированных андрогенных желез на половые признаки и физиологию репродуктивной системы у самок краснопалых раков, Cherax квадрикаринатус. General and Comparative Endocrinology, 121(3):242-249

Khalaila I, Manor R, Weil S, Yosef Granot, Keller R, Sagi A, 2002.Эндокринная ось глазной стебель-андрогенная железа-яички у раков Cherax quadricarinatus. General and Comparative Endocrinology, 127(2):147-156

Khalaila I, Peter-Katalinic J, Tsang C, Radcliffe CM, Aflalo ED, Harvey DJ, Dwek RA, Rudd PM, Sagi A, 2004. Структурная характеристика Фрагмент N-гликана и сайт гликозилирования в вителлогенине десятиногих ракообразных Cherax quadricarinatus. Glycobiology, 14:767-774

King C, 1993. Потенциальная плодовитость краснопалого рака Cherax quadricarinatus von Martens в культуре.Aquaculture, 114(3-4):237-241

King CR, 1994. Рост и выживание детенышей красного клешневого рака (Cherax quadricarinatus Von Martens) в зависимости от температуры, с комментариями относительно пригодности Cherax quadricarinatus и Cherax destructor для культура Квинсленда. Aquaculture (Netherlands), 122(1):75-80

Koutrakis E, Perdikaris C, Machino Y, Savvidis G, Margaris N, 2007. Распространение, недавняя смертность и меры по сохранению раков в греческих пресных водах.Bulletin Français de la Pêche et de la Piscicolture, 385:25-44

Лоуренс С., Джонс С., 2002. Cherax. В: Холдич Д.М., изд. Биология пресноводных раков, Blackwell Science, Великобритания, 635-669

Лодж Д.М., Тейлор К.А., Холдич Д.М., Скурдал Дж., 2000. Снижение воздействия интродукции экзотических раков: необходима новая политика. Fisheries, 25(8):21-23

Lynas J, Storey A, Knott B, 2007. Интродукция и распространение раков (Parastacidae) в Западной Австралии и их способность вытеснять местные виды.В кн.: Биологические вселенцы во внутренних водах: профили, распространение и угрозы [под ред. Герарди, Ф.]. Дордрехт, Нидерланды: Springer, 577-596

Macaranas JM, Mather PB, Hoeben P, Capra MF, 1995. Оценка генетической изменчивости диких популяций краснопалых раков (Cherax quadricarinatus, von Martens 1868) с помощью аллозимов и Маркеры RAPD-ПЦР. Marine and Freshwater Research, 46(8):1217-1228

McPhee CP, Jones CM, Shanks SA, 2004. Отбор красноклешневых раков (Cherax quadricarinatus) на увеличение веса в возрасте девяти месяцев.Аквакультура, в печати

Meade ME, Watts SA, 1995. Токсичность аммиака, нитритов и нитратов для молодых австралийских раков, Cherax quadricarinatus. Journal of Shellfish Research, 14:341-346

Medley P, Rouse DB, 1993. Интерсексуальные австралийские красноклешневые раки (Cherax quadricarinatus). Journal of Shellfish Research, 12:93-94

Medley PB, Nelson RG, Hatch LU, Rouse DB, Pinto GF, 1994. Экономическая осуществимость и анализ риска аквакультуры австралийских красноклешневых раков Cherax quadricarinatus на юго-востоке США.Journal of the World Aquaculture Society, 25(1):135-146

Moor I de, 2002. Потенциальное воздействие чужеродных пресноводных раков на Южную Африку. African Journal of Aquatic Science, 27:125-139

Morgan DL, Rowland AJ, Gill HS, Doupé RG, 2004. Последствия интродукции крупного рыбоядного (Lates calcarifer) в регулируемую реку северной Австралии (озеро Кунунурра, Западная Австралия) ). Озера и водохранилища: исследования и управление, 9:181-193

Музиник Л.А., Томпсон К.Р., Моррис А., Вебстер К.Д., Роуз Д.Б., Маномайтис Л., 2004.Частичная и полная замена рыбной муки соевой мукой и пивной дробины дрожжами в практических рационах австралийских краснопалых раков Cherax quadricarinatus. Aquaculture, 230(1/4):359-376

Parnes S, Khalaila I, Hulata G, Sagi A, 2003. Определение пола у раков: являются ли интерсексуалы Cherax quadricarinatus (Decapoda, Parastacidae) генетически самками? Genetic Research, 82(2):107-116

Perdikaris C, Koutrakis M, Machino Y, 2005. Обзор ситуации с раками в Греции.Crayfish News-IAA Newsletter, 27(4):5-7

Piroddi G, Arrignon J, 2000. L’elevage de l’ecrevisse en Nouvell Caledonie. L’Astaciculteur de France, 64:2-7

Ponce-Palafox JT, Arredondo-Figueroa JL, Romero X, 1999. [английское название недоступно]. (Анализ коммерческого культивирования лангоста-де-агуа-дульсе (Cherax quadricarinatus): возможно воздействие на Латинскую Америку.) Contactos, 31:54-61

Ричардсон Н.А., Андерсон А.Дж., Сара В.Р., 1997. Эффекты инсулина/ IGF-I на метаболизм глюкозы и лейцина у красноклешневого рака (Cherax quadricarinatus).General and Comparative Endocrinology, 105:287-293

Riek EF, 1969. Австралийские пресноводные раки (Crustacea: Decapoda: Parastacidae) с описанием новых видов. Australian Journal of Zoology, 17:855-918

Romero X, 1997. Производство красноклешневых раков в Эквадоре. World Aquaculture, 28:5-10

Romero X, Turnbull JF, Jiménez R, 2000. Ультраструктура и цитопатология риккетсиеподобного организма, вызывающего системную инфекцию у краснопалого рака Cherax quadricarinatus (Crustacea: Decapoda), в Эквадоре.Journal of Invertebrate Pathology, 76(2):95-104

Romero XM, 2002. Взлеты и падения в выращивании раков с красными клешнями в Эквадоре. World Aquaculture, 33:40-41, 70-71

Sagi A, Khalaila I, Barki A, Hulata G, Karplus I, 1996. Интерсексуальные краснопалые раки, Cherax quadricarinatus (von Martens): функциональные самцы с превителлогенными яичниками . Biological Bulletin, 190:16-23

Sagi A, Milstein A, Eran Y, Joseph D, Khalaila I, Abdu U, Harpaz S, Karplus I, 1998. Разведение австралийских раков с красными клешнями (Cherax quadricarinatus) в Израиле.II. Второй сезон роста перезимовавших популяций. Israel Journal of Aquaculture, 49:222-229

Sagi A, Shoukrun I, Khalaila I, Rise M, 1996. Созревание гонад, морфологические и физиологические изменения во время первого репродуктивного цикла самки рака Cherax quadricarinatus. Invertebrate Reproduction and Development, 29:235-242

Saker ML, Eaglesham GK, 1999. Накопление цилиндроспермопсина из цианобактерии Cylindrospermopsis raciborskii в тканях красного клешневого рака Cherax quadricarinatus.Toxicon (Oxford), 37(7):1065-1077

Semple GP, Rouse DB, McLain KR, 1995. C. destructor, C. tenuimanus, C. quadricarinatus (Decapoda: Parastacidae): сравнительный обзор биологических признаков, связанных к аквакультурному потенциалу. Пресноводные раки, 8:495-503

Serrano-Pinto V, Vazquez-Boucard C, Villarreal-Colmenares H, 2003. Белки желтка во время развития яичников и яиц половозрелых самок пресноводных раков (Cherax quadricarinatus). Сравнительная биохимия и физиология.A, Molecular & Integrative Physiology, 134(1):33-43

Shechter A, Aflalo ED, Davis C, Sagi A, 2005. Экспрессия гена вителлогенина, специфичного для репродуктивных самок, у самцов и интерсексуальных раков Cherax quadricarinatus, индуцированных эндокринологически. Биология репродукции, 73(1):72-79. http://www.biolreprod.org/

Шехтер А., Берман А., Зингер А., Фрейман А., Гринштейн М., Эрез Дж., Афлало Э.Д., Саги А., 2008. Реципрокные изменения в кальцификации гастролитов и кутикулы во время линьки цикл красноклешневого рака Cherax quadricarinatus.Биологический бюллетень, 214(2):122-134. http://www.biolbull.org/cgi/content/abstract/214/2/122

Snovsky G, Galil BS, 2011. Австралийский краснопалый рак Cherax quadricarinatus (von Martens, 1868) (Crustacea: Decapoda: Parastactidae) в Галилейском море, Израиль. Aquatic Invasions, 6:S29-S31

Soroka Y, Sagi A, Khalaila I, Abdu U, Milner Y, 2000. Изменения протеинкиназы C во время вителлогенеза у раков Cherax quadricarinatus — возможная активация метилфарнезоатом.General and Comparative Endocrinology, 118(2):200-208

Souty-Grosset C, Holdich DM, Noël PY, Reynolds JD, Haffner P, 2006. Atlas of Crayfish in Europe, Patrimoines naturels 64. Париж, Франция: Национальный музей d’Histoire naturelle

Taylor CA, 2002. Таксономия и сохранение местных запасов раков. В: Холдич Д.М., изд. Биология пресноводных раков. Оксфорд, Великобритания: Blackwell Science Ltd., 236-257

Тодд С., 2005 г. Завезенные красноклешневые раки на Ямайке. Интродуцированные красноклешневые раки на Ямайке., Ямайка: Механизм посредничества Ямайки. http://jamaicachm.org.jm/PDF/April2005.pdf

Tricarico E, Vilizzi L, Gherardi F, Copp GH, 2009. Калибровка FI-ISK, инструмента скрининга инвазивности неместных пресноводных беспозвоночных. Анализ рисков

Vigliano PH, Darrigran G, 2002. Системы пресной воды Аргентины: инопланетяне в стране чудес. В: Материалы 11-й Международной конференции по водным инвазивным видам, Александрия, 25-28 февраля 2002 г.

Vogt G, 2002.Функциональная анатомия В: Холдич Д.М., изд. Биология пресноводных раков. Оксфорд, Великобритания: Blackwell Science Ltd., 53-151

Williams Jr, EW, Bunkley-Williams L, Lilyestrom CG, Ortiz-Corps EA, 2001. Обзор недавних интродукций водных беспозвоночных в Пуэрто-Рико и последствия для управления неаборигенных видов. Карибский журнал науки, 37:246-251

Wingfield M, 2002. Обзор индустрии выращивания пресноводных раков в Австралии. Пресноводные раки, 13:177-184

У ЧжиСинь, Чен Сяо Сюань, Тан Чжэнью, 2000.Исследование толерантности красных раков (Cherax quadricarinatus) к трем дезинфицирующим средствам. Журнал Хуачжунского сельскохозяйственного университета, 19(4), 381-383.

Xue XM, Anderson AJ, Richardson NA, Anderson AJ, Xue GP, Mather PB, 1999. Характеристика целлюлазной активности в пищеварительной системе красного клешневого рака (Cherax quadricarinatus). Aquaculture, 180(3/4):373-386

Yeh HS, Rouse DB, 1995. Влияние температуры воды, плотности и соотношения полов на скорость нереста красноклешневых раков Cherax quadricarinatus (von Martens).Журнал Всемирного общества аквакультуры, 26(2):160-164

Zimmerman HG, 2003. Южная Африка. В: Инвазивные чужеродные виды на юге Африки: национальные отчеты и каталог ресурсов [под ред. Макдональд И.А.В. \Ризер Дж.К.\Брайт К.\Невилл Л.Э.\Ховард Г.В.\Мерфи С.Дж.\Престон Г.]. Кейптаун, Южная Африка: Глобальная программа по инвазивным видам

Distribution References

Ackefors HEG, 2000. Технология выращивания пресноводных раков в 1990-х годах: европейская и глобальная перспективы.Рыба и рыболовство. 1 (4), 337-359.

Ahyong ST, Yeo DCJ, 2007. Дикие популяции австралийских краснопалых раков (Cherax quadricarinatus von Martens) в водосборных бассейнах Сингапура. В: Биологические вторжения, 9 943-946.

Belle CC, Yeo DCJ, 2010. Новые наблюдения экзотического австралийского красноклешневого рака Cherax quadricarinatus (von Martens, 1868) (Crustacea: Decapoda: Parastactidae) в Сингапуре. В: Природа в Сингапуре, 3 99-102.

Бортолини Дж. Л., Альварес Ф., Родригес-Альмарас Г., 2007 г.О присутствии австралийского красноклешневого рака Cherax quadricarinatus в Мексике. Биологические вторжения. 9 (5), 615-620. http://www.springerlink.com/content/j71700153298725g/fulltext.html DOI:10.1007/s10530-006-9054-0

CABI, 2004. Техническое описание Cherax quadricarinatus. В: Справочник по аквакультуре, Уоллингфорд, Великобритания: CABI. http://www.cabi.org/ac

CABI, без даты. Запись компендиума. Уоллингфорд, Великобритания: CABI

CABI, без даты a. CABI Compendium: Статус определен на основе регионального распространения.Уоллингфорд, Великобритания: CABI

CABI, без даты b. Компендиум CABI: статус определяется редактором CABI. Уоллингфорд, Великобритания: CABI

Chang AKW, 2001. Анализ эффективности рецептурного корма в сравнении с коммерческим кормом для креветок для раков Cherax quadricarinatus. В: Мировая аквакультура, 32 19-23.

Cortés-Jacinto E, Villarreal-Colmenares H, Civera-Cerecedo R, Naranjo-Páramo J, 2004. Влияние уровня пищевого белка на рост и выживание предвзрослых пресноводных раков Cherax quadricarinatus (von Martens) в однополой культуре.Исследования аквакультуры. 35 (1), 71-79. http://www.blackwell-synergy.com/links/doi/10.1111/j.1365-2109.2004.00988.x/abs/ DOI:10.1111/j.1365-2109.2004.00988.x

D’Agaro E, Luise GDe, Lanari D, 1999. Текущее состояние разведения раков в Италии. В: Пресноводные раки, 12 506-517.

Доупе Р.Г., Морган Д.Л., Гилл Х.С., Роуленд А.Дж., 2004. Интродукция красноклешневых раков Cherax quadricarinatus (von Martens) в озеро Кунунурра, река Орд, Западная Австралия: перспективы появления ябби в Кимберли.В: Журнал Королевского общества Западной Австралии, 87 187-191.

FAO-DIAS, 2011. База данных по интродукции водных видов. Глобальная информационная система ФАО по рыболовству. В: База данных по интродукциям водных видов. Глобальная информационная система ФАО по рыболовству, http://www.fao.org/fi/figis/

Garcia Vazquez S, 2009. Распространение экзотических австралийских раков Cherax quadricarinatus (von Martens, 1868) в Пуэрто-Рико, Маягуэс, Пуэрто-Рико. : Университет Пуэрто-Рико. 70 стр.

Грофф Дж. М., Макдауэлл Т., Фридман К. С., Хедрик Р. П., 1993.Обнаружение незакупоренного бакуловируса у пресноводных раков Cherax quadricarinatus в Северной Америке. Журнал здоровья водных животных. 5 (4), 275-279. DOI:10.1577/1548-8667(1993)005<0275:DOANBI>2.3.CO;2

Holthuis LB, 1986. Пресноводные раки Новой Гвинеи. В: Пресноводные раки, 6 48-58.

Karplus I, Barki A, Cohen S, Hulata G, 1995. Разведение австралийского красноклешневого рака Cherax quadricarinatus в Израиле: I. Поликультура с рыбой в земляных прудах. В: Израильский журнал аквакультуры, 47 6-16.

Кутракис Э., Пердикарис С., Мачино Ю., Саввидис Г., Маргарис Н., 2007 г. Распространение, недавняя смертность и меры по сохранению раков в греческих пресных водах. В: Bulletin Français de la Pêche et de la Piscicolture, 385 25–44.

Лоуренс С., Джонс С., 2002. Черакс. В кн.: Биология пресноводных раков. [ред. по Холдичу Д. М.]. Оксфорд, Великобритания: Blackwell Science. 635-669.

Lynas J, Storey A, Knott B, 2007. Интродукция и распространение раков (Parastacidae) в Западной Австралии и их способность вытеснять местные виды.В: Биологические вселенцы во внутренних водах: профили, распространение и угрозы, [под ред. Герарди Ф.]. Дордрехт, Нидерланды: Springer. 577-596.

Медли П. Б., Нельсон Р. Г., Хэтч Л. У., Роуз Д. Б., Пинто Г. Ф., 1994. Экономическая осуществимость и анализ риска аквакультуры австралийских красноклешневых раков Cherax quadricarinatus на юго-востоке США. Журнал Всемирного общества аквакультуры. 25 (1), 135-146. DOI:10.1111/j.1749-7345.1994.tb00813.x

Moor I de, 2002. Потенциальное воздействие чужеродных пресноводных раков в Южной Африке.В: Африканский журнал водных наук, 27 125-139.

Музиник Л.А., Томпсон К.Р., Моррис А., Вебстер С.Д., Роуз Д.Б., Маномайтис Л., 2004. Частичная и полная замена рыбной муки соевой мукой и пивных зерен дрожжами в практических рационах для австралийских красноклешневых раков Cherax quadricarinatus. Аквакультура. 230 (1/4), 359-376. DOI: 10.1016/S0044-8486(03)00420-4

Piroddi G, Arrignon J, 2000. (L’elevage de l’ecrevisse en Nouvell Caledonie). В: L’Astaciculteur de France, 64 2-7.

Romero X, 1997 г. Производство краснопалых раков в Эквадоре. В: Мировая аквакультура, 28 5-10.

Romero X, 2002. Взлеты и падения в выращивании красноклешневых раков в Эквадоре. В: Журнал World Aquaculture, Всемирное общество аквакультуры (WAS). 4 стр. http://www.was.org/main/summary.asp?page=magazine

Seebens H, Blackburn TM, Dyer EE, Genovesi P, Hulme PE, Jeschke JM, Pagad S, Pyšek P, Winter M , Ариануцу М., Бахер С., Блазиус Б., Брунду Г., Капинья С., Селести-Грапов Л., Доусон В., Дуллинджер С., Фуэнтес Н., Ягер Х., Картес Дж., Кенис М., Крефт Х., Кюн И., Ленцнер Б., Либхольд А. , Мосена А. (и др.), 2017.Нет насыщения в накоплении чужеродных видов по всему миру. Связь с природой. 8 (2), 14435. http://www.nature.com/articles/ncomms14435

Сновский Г., Галил Б.С., 2011. Австралийский краснопалый рак Cherax quadricarinatus (von Martens, 1868) (Crustacea: Decapoda: Parastactidae) в Галилейское море, Израиль. Водные вторжения. 6 (Прил. 1), С29-С31. http://www.aquaticinvasions.net/2011/Supplement/AI_2011_6_S1_Snovsky_Galil.pdf DOI:10.3391/ai.2011.6.S1.007

Souty-Grosset C, Holdich DM, Noël PY, Reynolds JD, Haffner P, 2006.Атлас раков в Европе, Patrimoines naturels., 64 Париж, Франция: Национальный музей естественной истории.

Тодд С., 2005 г. Интродуцированные красноклешневые раки на Ямайке., Ямайка: Ямайский механизм посредничества. http://jamaicachm.org.jm/PDF/April2005.pdf

Vigliano PH, Darrigran G, 2002. Пресноводные системы Аргентины: пришельцы в стране чудес. [Материалы 11-й Международной конференции по водным инвазивным видам, Александрия, 25-28 февраля 2002 г.],

Williams Jr EW, Bunkley-Williams L, Lilyestrom CG, Ortiz-Corps EA, 2001.Обзор недавних интродукций водных беспозвоночных в Пуэрто-Рико и последствия для управления неместными видами. В: Карибский журнал науки, 37 246-251.

Wu ZhiXin, Chen XiaoXuan, Tang ZhenYu, 2000. Исследование устойчивости красных раков (Cherax quadricarinatus) к трем дезинфицирующим средствам. Журнал Хуачжунского сельскохозяйственного университета. 19 (4), 381-383.

Zimmerman HG, 2003 г. Южная Африка. В: Инвазивные чужеродные виды на юге Африки: национальные отчеты и каталог ресурсов, [под ред.Mcdonald IAW, Reaser JK, Bright C, Neville LE, Howard GW, Murphy SJ, Preston G]. Кейптаун, Южная Африка: Глобальная программа по инвазивным видам.

УФ-обработка в УЗВ влияет на микробиоту воды для выращивания и снижает выживаемость личинок европейского омара (Homarus gammarus) важно для стабильного производства молоди омаров хорошего качества. Создавая среду, исключающую патогены и преобладающую мутуалистическую бактерию, увеличивается вероятность развития здоровых отношений между хозяином и микробом и получения здоровой молоди.Дезинфекция воды и внезапное увеличение количества органических веществ в резервуарах для культивирования являются процессами, открывающими неконтролируемый рост микробов в воде для выращивания. Это увеличивает изменчивость в развитии микробиоты между повторяющимися резервуарами для выращивания и способствует отбору потенциально вредных условно-патогенных бактерий. В двух экспериментах по началу кормления европейского лобстера (

Homarus gammarus ) мы сравнили бактериальную среду в трех типах систем выращивания: рециркуляционная система аквакультуры (УЗВ) с УФ-обработкой непосредственно перед каналами выращивания, УЗВ без дезинфекции и обычная проточная система (FTS).Было высказано предположение, что УЗВ без дезинфекции стабилизирует микробиоту воды для выращивания, отбирает условно-патогенные бактерии и снижает изменчивость результатов производства между повторными резервуарами по сравнению с другими системами. Как и предсказывалось, в трех разных системах развился значительно различающийся состав микробиоты в воде для выращивания и личинках. В среднем выживаемость личинок в УЗВ без дезинфекции увеличилась на 43 и 275 % в первом опыте и на 64 и 18 % во втором опыте по сравнению с УЗВ с УФ и ФТС соответственно.Кроме того, УЗВ без дезинфекции показала меньшую изменчивость в выживаемости личинок между повторными резервуарами и партиями по сравнению с другими обработками. Результаты являются многообещающими для контроля микробиоты воды для выращивания с целью улучшения, увеличения и стабилизации производства морских личинок путем грамотного использования режимов очистки и селекции воды. На основании представленной и предыдущей работы УЗВ рекомендуется вместо ФТС, а в УЗВ рекомендуется избегать точечной дезинфекции оборотной воды, чтобы обеспечить стабильную и полезную микробную среду при культивировании морских личинок.

Ключевые слова

ключевые слова

RAS

RAS

Recirculation

Дезинфекция

UV

Marine Larvae

BACTERIA

Микробное созревание

КАЧЕСТВО 70003

УПРАВЛЕНИЕ Вода

Управление на воду

Управление

Европейская лобстер

HOMARUS

K-выбор

Рекомендованные статьиСсылки на статьи (0)

© 2021 The Authors.

Отставить комментарий

Обязательные для заполнения поля отмечены*